聚多巴胺功能化大肠杆菌生物电催化剂的构建及其氧还原性能.pdf
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1、细胞外电子传递(E x t r a c e l l u l a rE l e c t r o nT r a n s p o r t,E E T)能力是影响微生物电催化剂催化活性的关键因素,然而,缓慢的生物-非生物界面E E T效率严重限制了微生物燃料电池(M i c r o b i a lF u e lC e l l,MF C)中阴极氧还原反应(O x y g e nR e d u c t i o nR e a c t i o n,O R R)的生物电催化性能.通过在单个大肠杆菌(E.c o l i)细胞表面原位包覆共轭导电聚多巴胺(P D A)功能性涂层,有效提高了微生物细胞的界面导电性和黏
2、附性,并且不影响其生物活性.与天然的大肠杆菌相比,经过P D A修饰的大肠杆菌作为OR R的生物电催化剂时,E E T效率显著提高,实现了更大的OR R电催化活性,氧还原电流密度达到2.6 2mAc m-2.此外,采用P D A修饰的大肠杆菌作为生物阴极组成的MF C的最大输出功率密度达到9 5.3Wc m-2,与天然的大肠杆菌相比提高了1.1 4倍.研究结果表明,共轭导电聚合物P D A具有氨基、酚基等亲水基团,可以提高底物的亲水性,还具有醌基可以加速细胞外呼吸过程中的电子转移,利用其修饰细菌可以赋予细菌更多的额外功能,例如导电性和黏附性,进而有效提高其电催化性能,为制备高活性生物电催化材料
3、以及提高MF C的产电性能提供了一种有前途的策略.关键词:生物电催化剂;细胞外电子传递;氧还原反应;功能性涂层;微生物燃料电池中图分类号:O 4 1 3文献标志码:A随着化石能源造成的环境污染问题日益严重,探索和开发可再生及环境友好的新型替代能源技术成为研究领域的热点1-2.微生物燃料电池(MF C)作为一种绿色可持续的新兴生物电化学技术而备受关注3-5,其利用微生物细胞呼吸过程中复杂的氧化还原反应将化学能直接转换为电能,在污水处理、生物修复和清洁电能生产方面展现了巨大的潜力6-7.氧还原反应(O R R)是发生在MF C阴极上的主要反应8.因此,研发高效率和低成本的O R R电催化剂是促进M
4、F C进一步发展的关键.生物电催化剂具有绿色、高效和可再生的生物学特性,利用生物系统材料来催化MF C阴极上发生的氧还原反应对于可持续能源发展具有重要意义9-1 1.分离的氧化还原酶和电活性微生物细胞是两种最常见和应用最广泛的生物电催化剂.相对于氧化还原酶的易失活和易脆性,微生物细胞具有自我复制和自我修复的特性,增强了生物催化平台的运行稳定性9.然而,电活性微生物自身的细胞膜导电性较差,这将导致微生物细胞之间的跨细胞膜界面以及微生物与电极之间的生物/非生物界面细胞外电子转移(E E T)速率缓慢,限制了微生物细胞的生物电催化活性和产电效率1 2-1 5.对微生物细胞进行导电纳米修饰,不仅能对细
5、胞提供保护作用,增强其耐受性和稳定性,而且能提升它们的本征催化活性和导电性1 6-1 7,从而提高生物电催化O R R能力和MF C的整体性能.在微生物细胞表面涂覆多功能导电纳米材料,可以改善活细胞的代谢或增强其对恶劣环境的抵抗力1 8-1 9.含有共轭双键和离域轨道的导电聚合物作为生物电极和生物系统之间的中介材料,可以与生物系统发生密切的相互作用,并 收稿日期:2 0 2 3-0 4-1 8;修回日期:2 0 2 3-0 5-1 3.基金项目:国家自然科学基金(5 1 9 2 2 0 0 8;5 2 2 7 1 1 7 6).作者简介(通信作者):白正宇(1 9 7 9-),女,河南濮阳人,
6、河南师范大学教授,博士生导师,国家优青,研究方向为能源材料电化学,E-m a i l:b a i z h e n g y u h t u.e d u.c n.且能增强细胞的稳定性,如在细胞表面原位合成的聚吡咯(P P y)“导电细胞壁”可以有效地加速E E T,而不损害生物催化活性或产电效率,因此,MF C的电流或发电量可以大大增强.然而,一个被忽视的问题是,P P y的疏水性导致电活性细菌黏附性降低,增加了生物膜形成的难度.具有黏附性的导电纳米材料可以直接影响内部细胞和外部环境之间的质量和能量交流,不仅能够作为连接相邻细胞的电子桥梁,同时赋予其良好的附着力,使功能化后的细胞密集附着在电极表面
7、2 0.研究表明,多巴胺前体在电极表面沉积为多功能和强黏附膜的独特特征是由于其分子结构中存在儿茶酚和胺基.聚多巴胺(P D A)和不同种类的生物分子之间的相互作用,如氢键、疏水相互作用和芳香-阳离子相互作用,已被用于促进各种物质的黏附,如蛋白质、核苷酸、低聚糖和脂类.另外,P D A具有丰富的官能团,例如氨基、酚羟基等亲水基团,可以提高底物的亲水性.P D A还具有大量的醌基,是氧化还原活性功能配体,进一步适用于加速细胞外呼吸过程中的电子转移,改善细胞与电极之间的界面电子转移2 1-2 2.此外,P D A具有优异的生物相容性,良好的黏附力,可以保护微生物细胞的生存能力2 3.本文通过在单个大
8、肠杆菌表面原位聚合得到P D A功能性涂层(E.c o l ic e l l P D A),可以改善生物/无机界面的电子转移,并对其生物电催化能力进行评估.P D A功能性涂层的成功制备在不降低细菌细胞活力的情况下提高细菌细胞的导电性,E E T效率显著提高.电化学测试结果显示,P D A功能性涂层可以提高大肠杆菌的O R R电催化活性,E.c o l ic e l l P D A在MF C中作为生物阴极,氧还原电流密度明显提高,由天然大肠杆菌(n a t i v eE.c o l ic e l l)的2.1 3mAc m-2增加到2.6 2mAc m-2,最大输出功率密度达到9 5.3Wc
9、m-2,为功能化生物电催化剂的构建及性能调控提供了一种有效策略.1 实验部分1.1 细菌培养大肠杆菌在L B培养基(1 0.0gL-1胰蛋白胨、1 0.0gL-1N a C l、5.0gL-1酵母粉)中,在3 7的摇床(2 0 0rm i n-1)上复苏78h,再经过扩大培养7h左右到达生长平台期,通过离心(40 0 0rm i n-1,4m i n)收集细菌沉淀以供进一步使用.P D A涂层包覆大肠杆菌的过程:将收集到的细菌沉淀悬浮于1 0m LT r i s-HC l缓冲溶液(p H=8.5)中,加入1 0.0m g的盐酸多巴胺,在摇床上振荡4h(3 7,2 0 0rm i n-1),离心
10、(60 0 0rm i n-1,4m i n)获得E.c o l ic e l l P D A的细菌沉淀.1.2 生物电极的构建将依次通过丙酮、无水乙醇和混酸(V(浓硫酸)V(浓硝酸)=31)超声处理、洗至中性并干燥过的碳布(2c m2c m)放入被P D A包覆的大肠杆菌的L B培养基悬浮液中,在摇床上(3 7,2 0 0rm i n-1)摇3 6h左右,使细菌牢固地附着在碳布上.为了进行比较,天然大肠杆菌的电极也按照同样的步骤制备.1.3 材料表征细菌悬浮液用超纯水洗涤3次,接着在戊二醛中固定8h左右,离心,再用超纯水洗涤3次,然后依次用不同体积浓度的乙醇(体积分数分别为3 0%、5 0%
11、、7 0%、8 5%、9 0%、1 0 0%)梯度洗脱,每个体积浓度洗脱3次,每次持续1 0 m i n.利用S U 8 0 1 0扫 描电子显微 镜(S EM)观 察 制 备 的 生 物 电 催 化 剂 的 表 面 形 貌,J EM-2 1 0 0高分辨透射电子显微镜(T EM)观察生物电催化剂的内部结构.利用L a b R AM H RE v o l u t i o n高分辨拉曼光谱仪和N E X U S红外光谱仪进行结构测试,利用P 2 0 0/P 2 0 0+紫外可见分光光度计对物质的组成进行测定和分析.1.4 细菌活力测试使用L I V E/D E A D染色细菌活力试剂盒对细胞活力
12、进行检测.按照产品说明书配制染色工作液(V(N u-c G r e e n)V(E t h D-)=12),将细菌悬液稀释到合适的体积浓度,取1m L细菌悬液,加入1 0L的染色工作液,充分混合,室温 避光孵育1 5 m i n,之后取1 0L细菌悬 液滴在带有 盖玻片的载 玻片上,使用F V 1 2 0 0 MO E激光共聚焦显微镜进行拍照.1.5 微生物燃料电池的组成采用双室MF C(内腔容积5 0m L),由质子交换膜N a f i o n 1 1 7膜隔开,阳极为4 0%P t/C|C C,阴极为13第5期 白正宇,等:聚多巴胺功能化大肠杆菌生物电催化剂的构建及其氧还原性能E.c o
13、l ic e l l P D A|C C或n a t i v eE.c o l ic e l l|C C.阳极室中加入含1m o lL-1葡萄糖的1 0P B S缓冲溶液(7.5 1 80gN a2H P O41 2 H2O,1.4 9 60gKH2P O4,2.4 8 00gN a C l,0.0 6 00gM g S O4,0.0 0 56gC a C l2),通入氮气,阴极室中加入含4gL-1葡萄糖的1 0P B S缓冲溶液,2m L的L B培养基和适量菌液,通入氧气.MF C的外电阻均为10 0 0,均在3 7下操作.每次测试都要准备3个独立的MF C.阳极的制备过程为:称取0.0 0
14、 46g的4 0%(质量分数)铂碳分散于2m L异丙醇中,超声混匀,接着加入2 9 3LN a f i o n溶液继续超声均匀.用微量注射器分多次移取上述4 0 0L分散液涂至预先处理好的碳布上,在室温下晾干即可.1.6 电化学测试使用上海辰华CH I 7 6 0 E电化学工作站,3 7下采用标准三电极体系(对电极为铂片电极,参比电极为银/氯化银电极,工作电极为负载细菌的碳布电极),在氧气或氮气饱和的M 9溶液中进行O R R电化学测试.循环伏安法(C V)和线性扫描伏安法(L S V)均在-0.60.3V电压之间进行测试.电极的制备过程为:将天然的大肠杆菌或P D A包覆的大肠杆菌悬浮于5
15、0m L的L B培养基中,加入预先处理好的碳布,置于摇床(3 7,2 0 0rm i n-1)中振荡3 6h,此时细菌已经附着碳布上,将碳布取出,室温下晾干,即为所制备的工作电极.2 结果与讨论P D A功能性涂层是在单个细菌表面通过多巴胺单体原位氧化聚合得到,经过优化聚合时间,在大肠杆菌表面形成均匀的P D A纳米壳层.通过扫描电子显微镜和超薄切片的透射电子显微镜测试可以观察到P D A纳米涂层包覆前后的细菌表面的形态变化(如图1所示).从扫描电子显微镜(S EM)图(图1 a)可以看出,天然的大肠杆菌细胞由于脱水表面出现褶皱,但整体表面相对光滑.而经过P D A功能涂层包覆的大肠杆菌细胞更
16、加圆润(图1 d),这归因于P D A涂层对细胞的保护作用,此外,可以明显看到包覆后细胞表面比较粗糙,布满了纳米颗粒.通过切片的透射电子显微镜(T EM)图(图1 b)和切片T EM图的局部放大图(图1 c)可观察到大肠杆菌细胞表面相对光滑,细胞的内膜和 外 膜 可 以 清 晰 看 到。由P D A功能涂层包覆后的大肠杆菌细胞切片的透射电子显微镜(T EM)图(图1 e)和其局部放大图(图1 f)可清晰地看到,P D A纳米颗粒与细菌细胞外膜紧密连接并均匀包裹在细胞膜上,证明了在大肠杆菌细胞表面成功形成 了P D A纳 米 颗 粒.另 外,P D A纳米颗粒具有丰富的活性官能团,易与材料表面共
17、价交联,有希望连接细菌的电子导管,可以改善生物/电极界面间的电子转移2 4.为进一步确定细菌表面形成的聚合物涂层的组成结构,对其进行了光谱分析.首先利用拉曼光谱(图2 a)分析P D A涂层的分子结构,在单纯的P D A聚合物的拉曼光谱中,13 3 8c m-1和14 1 4c m-1的吸收峰归属于C=O键的特征峰,15 8 3c m-1的吸收峰归属于芳烃C=C键的特征峰2 5,这些特征峰在P D A包覆的大肠杆菌细胞(E.c o l ic e l l P D A)的拉曼光谱中均存在,而在天然的大肠杆菌细胞(N a t i v eE.c o l ic e l l)的拉曼光23河南师范大学学报(
18、自然科学版)2 0 2 3年谱中未观察到P D A的特征峰,同时,在11 0 0c m-1处的特征峰是大肠杆菌自身的特征峰,这些结果表明P D A聚合物成功包覆在大肠杆菌细胞表面.另外,由UV-v i s光谱(图2 b)可看出大肠杆菌自身没有明显的吸收峰,而合成的纯P D A纳米颗粒与P D A包覆的大肠杆菌都有一个强烈的吸收峰(2 7 9n m)该吸收峰归因于P D A的特征峰,证实了P D A涂层在大肠杆菌细胞上的存在.通过傅里叶变换红外光谱(图2 c)对形成的聚合物涂层做进一步的分析,在11 1 8c m-1和12 8 5c m-1处的吸收峰归因于P D A的C-O键的伸缩振动2 6-2
19、 7,这些吸收峰在天然的大肠杆菌中均未发现,这些结果都证明了P D A成功地包覆在大肠杆菌表面.为了探讨P D A纳米涂层对细菌细胞生存活力的影响,通过L I V E/D E A D染色细菌活力试剂盒对细胞染色,进行共聚焦激光扫描显微镜(C L S M)的分析,发现经过P D A修饰的细菌细胞表现出强烈的绿色荧光和较弱的红色荧光(图2 e),与天然的大肠杆菌相似(图2 d),说明包覆前后均具有较高的活细胞比例.因此P D A涂层对大肠杆菌的活力几乎没有影响.接着通过UV-v i s光谱分析比较了天然的大肠杆菌和P D A包覆的大肠杆菌在L B培养基中在6 0 0n m处的光学密度(O D 6
20、0 0),来进一步监测细胞的生长情况(图2 f),从图2 f中可看出P D A包覆的大肠杆菌的孵育时间后进入了与天然细胞相似的繁殖阶段,说明P D A纳米涂层对大肠杆菌细胞的自分裂性能几乎没有影响,具有良好的生物相容性2 8.为了进一步探究P D A纳米涂层对大肠杆菌O R R电催化活性功能的促进作用,在P D A成功包覆大肠杆菌表面后,通过使用三电极电化学测试系统对功能化的大肠杆菌进行半电池电化学分析,结果表明与天然的大肠杆菌相比,E.c o l ic e l l P D A具有更高的电催化O R R活性,这归因于其显著增强了直接电子转移能力,以及电极上更密集的细菌附着量.为了证明E.c o
21、 l ic e l l P D A的电催化活性,在氧气或氮气饱和的M 9溶液中进行循环伏安(C V)测试.图3 a显示,在氧气饱和的M 9溶液中进行C V测试时,扫描速率为5 0mVs-1,不同的大肠杆菌均在0.3 5Vv s.RHE有一个明显的阴极还原峰,与天然的大肠杆菌(2.1 3mAc m-2)相比,E.c o l ic e l l P D A的还原电流(2.6 2mAc m-2)增加了约2 3%.通过线性扫描(L S V)测试(图3 b)结果可看出,E.c o l ic e l l P D A生物催化剂的极限电流密度比天然的大肠杆菌增加了约0.1mAc m-2,这些结果表明E.c o
22、l ic e l l P D A有更好的O R R催化活性,归因于P D A具有良好的导电性以及丰富的活性官能团,产生了更多的催化活性位点,有助于大肠杆菌催化活性的提高.为了探究生物-非生物界面的电荷转移电阻,进行了电化学阻抗谱(E I S)分析测试,对比两种生物催化剂的N y q u i s t图(图3 c)可以发现,E.c o l ic e l l P D A的电阻要小于天然的大肠杆菌,进一步证明了P D A功能性涂层的修饰显著提高了细胞与电极间的电子转移效率.在氮气饱和的M 9溶液中进行C V测试时,天然的大肠杆菌在约0.1 9V和0.3 0V(v s.RHE)处有一33第5期 白正宇,
23、等:聚多巴胺功能化大肠杆菌生物电催化剂的构建及其氧还原性能对明显的氧化还原峰(图3 d),这是由于大肠杆菌中的催化活性蛋白细胞色素c(C y tc)通过F e3+和F e2+之间的电子转移增强细胞的氧化还原活性.而E.c o l ic e l l P D A的氧化还原峰更加明显,说明具有更强的直接电子转移能力以及电化学氧化还原活性.在氮气饱和的M 9溶液中,以0.0 1到1.0 0Vs-1的不同扫描速率来记录氧化还原峰值电流(图3 e).根据峰值电流与扫描速率的对应关系(图3 f),发现峰值电流随扫描速率的增加呈线性增加,表明E.c o l ic e l l P D A的电催化O R R过程为
24、表面控制过程.为了评估不同细菌的生物发电能力,构建了双室微生物燃料电池(MF C).当MF C电压输出稳定时,在阴极和阳极之间连接不同的外部负载,得到功率密度曲线(图4 a)和电流-电压(I-V)的极化曲线(图4 b).结果表明,采用天然的大肠杆菌作为生物阴极的MF C的最大输出功率密度为4 4.5Wc m-2,E.c o l ic e l l P D A生物阴极的MF C的最大输出功率密度为9 5.3Wc m-2,其产电性能远高于天然的大肠杆菌,进一步说明E.c o l ic e l l P D A的电催化还原能力更好.从极化曲线可以看出,采用E.c o l ic e l l P D A的M
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