T∕CAQI 272-2022 茶叶及茶制品中黄曲霉毒素B1的测定.pdf
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1、 ICS 67.040 X 11 茶叶及茶制品中黄曲霉毒素 B1的测定 Detection of aflatoxin B1 in tea and tea products 2022-06-06 发布 2022-07-06 实施 T/CAQI 2722022 团团 体体 标标 准准 中 国 质 量 检 验 协 会 发布 CAQI 全国团体标准信息平台T/CAQI 272-2022 I 前 言 本文件参照GB/T 1.1-2020标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则给出的规则起草。 请注意本文件的某些内容有可能涉及专利, 本文件的发布机构不应承担识别这些专利的责任。 本文件由云南农
2、业大学提出,由中国质量检验协会归口。 本文件主要起草单位:云南农业大学、吉林省产品质量监督检验院、云南省茶叶流通协会、湖南省茶叶学会、四川省茶叶流通协会、勐腊易武福元昌茶业有限公司、昆明七彩云南庆沣祥茶业股份有限公司、云南新古派茶业有限公司。 本文件主要起草人: 盛军、方崇业、李桂杰、杜晓翠、刘俊会、张旭、杨军、李军英、戴欣、郭霖、郑宏儒、郭金萍、王佳旭、李适、牛之瑞、郭迎迎、谷乐、张琳琳、刘峻博、边策、彭磊、王云。 本文件为首次发布。 全国团体标准信息平台T/CAQI 272-2022 1 茶叶及茶制品中黄曲霉毒素 B1的测定 1 范围 本文件提供了茶叶及茶制品中黄曲霉毒素 B1(以下简称
3、AFT B1)的测定方法。 本文件第一法为同位素稀释液相色谱-串联质谱法,第二法为高效液相色谱法,适用于绿茶、红茶、黄茶、黑茶、白茶、乌龙茶、再加工茶、固态速溶茶、茶多酚以及茶黄素中AFT B1的测定。 2 规范性引用文件 下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。 其中, 注日期 的引用文件,仅注日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括 所有的修改单)适用于本文件。 GB 5009.22 食品安全国家标准 食品中黄曲霉毒素 B 族和 G 族的测定 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 第一法第一法 同位素稀释液相色谱同位素稀释液相色谱
4、-串联质谱法串联质谱法 3 原理 试样中的黄曲霉毒素B1,用85%乙腈水提取,固相萃取柱和免疫亲和柱净化,液相色谱分离,串联质谱检测,同位素内标法定量。 4 试剂和材料 除非另有规定,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水。 4.1 试剂 4.1.1 乙腈(CH3CN):色谱纯。 4.1.2 甲酸(CH2O2):色谱纯。 4.1.3 氯化钠(NaCl)。 4.1.4 磷酸氢二钠(Na2HPO4)。 4.1.5 磷酸二氢钾(KH2PO4)。 4.1.6 氯化钾(KCl)。 4.1.7 盐酸(HCl)。 4.1.8 吐温-20,(C58H114O26)。 全国团体标准信息平台
5、T/CAQI 272-2022 2 4.2 试剂配制 4.2.1 85%乙腈水:85 mL乙腈(4.1.1)中加入15 mL水。 4.2.2 0.1%甲酸水:取1 mL甲酸(4.1.2),加水定容至1000 mL。 4.2.3 磷酸盐缓冲溶液(以下简称PBS):称取8.00 g氯化钠(4.1.3)、1.20 g 磷酸氢二钠(4.1.4)、0.20 g 磷酸二氢钾(4.1.5)、0.20 g 氯化钾(4.1.6),用900 mL水溶解,用盐酸(4.1.7)调节pH至7.4 0.1,加水稀释至1000 mL。 4.2.4 吐温-20的PBS:取10 mL吐温-20(4.1.8),用PBS稀释至10
6、00 mL。 4.3 标准品 4.3.1 AFT B1标准品(C17H12O6,CAS:1162-65-8):纯度98%,或经国家认证并授予标准物质证书的标准物质。 4.3.2 同位素内标13C17-AFT B1(C17H12O6,CAS:1217449-45-0):纯度98%,浓度为0.5 g/mL。 注:标准物质可以满足溯源要求的商品化标准溶液。 4.4 标准溶液配制 4.4.1 标准储备溶液(10 g/mL):准确称取 AFT B1(4.3.1)1 mg (精确至 0.01 mg),置于 100 mL 容量瓶,用乙腈(4.1.1)溶解并稀释至刻度,摇匀,制成质量浓度为 10 g/mL的标
7、准储备液。溶液转移至试剂瓶中后,在-20下避光保存,备用。 4.4.2 标准中间液(100 ng/mL):准确移取 AFT B1标准储备溶液 1.00 mL 至 100 mL 容量瓶中,乙腈(4.1.1)定容。此溶液密封后避光-20下保存,有效期三个月。 4.4.3 同位素内标工作液 (100 ng/mL) : 准确移取 0.5 g/mL13C17-AFT B1(4.3.2) 2.0 mL,用乙腈(4.1.1)定容至 10 mL。在-20 下避光保存,备用,有效期三个月。 4.4.4 标准工作溶液:准确移取 AFT B1 (100 ng/mL)标准溶液 10 L、50 L、100 L、200
8、L、500 L、800 L、1000 L 于 10 mL 容量瓶中,加入 200 L 100 ng/mL 的同位素内标工作液,用初始流动相定容至刻度,配制标准曲线溶液浓度点为:0.1 ng/mL、0.5 ng/mL、1.0 ng/mL、2.0 ng/mL、5.0 ng/mL、8.0 ng/mL、10.0 ng/mL 的系列标准溶液。 4.5 材料 4.5.1 免疫亲和柱:AFT B1柱容量200 ng,回收率85%(对于不同批次的试剂盒在使用前需进行质量验证,验证方法参见 GB 5009.22 附录 B)。 4.5.2 固相萃取柱: 6 mL,1000 mg,含有 PSA、C18 和 MCX
9、等混合填料适用于茶叶样品基质黄曲霉毒素专用型的固相萃取柱。 全国团体标准信息平台T/CAQI 272-2022 3 4.5.3 玻璃纤维滤纸:快速、高载量、液体中颗粒保留 1.6 m。 4.5.4 微孔滤头:带 0.22 m 有机相微孔滤膜(所选用滤膜应采用标准溶液检验确认无吸附现象,方可使用)。 4.5.5 筛网:0.85 mm 试验筛孔径。 5 仪器设备 5.1 液相色谱-串联质谱仪:带电喷雾离子源。 5.2 天平:感量分别为 0.01 mg 和 0.01 g。 5.3 涡旋混合器。 5.4 高速粉碎机。 5.5 氮吹仪。 5.6 高速均质器:转速 6500 r/min 24000 r/m
10、in。 5.7 离心机:转速6000 r/min。 5.8 pH 计。 5.9 固相萃取装置。 6 试验步骤 警示: 整个分析操作过程应在指定区域内进行。 该区域应具备相对独立的操作台和废弃物存放装置。在实验过程中,操作者在配制 AFT B1标准溶液时应按照接触剧毒物的要求采取相应的保护措施。 6.1 试样制备 试样用高速粉碎机将其粉碎,过筛,使其粒径小于 0.85 mm 孔径试验筛。 6.2 试样前处理 6.2.1 提取 准确称取 5.0 g(精确到 0.01 g)样品于 50 mL 具塞离心管中,加入 100 L 同位素内标工作液 (4.4.3) , 加入 20 mL 85% 乙腈水, 涡
11、旋混匀, 高速均质器均质提取 3 min, 6000 r/min离心 10 min ,上清液用玻璃纤维滤纸过滤,滤液待净化。 6.2.2 净化 6.2.2.1 固相萃取柱净化 固相萃取柱(4.5.2)用 5 mL 85%乙腈水溶液活化,取 4 mL 滤液通过固相萃取柱中,收集净化液,再用 5 mL 85%乙腈水分两次洗脱,流速控制在 1 mL/min3 mL/min,合并净化液。氮吹浓缩至 4 mL,用吐温-20 的 PBS 缓冲液定容至 50 mL,混匀,待免疫亲和柱净全国团体标准信息平台T/CAQI 272-2022 4 化。 6.2.2.3 免疫亲和柱净化 6.2.2.3.1 免疫亲和柱
12、的准备 将低温下保存的免疫亲和柱(4.5.1)恢复至室温。 6.2.2.3.2 试样的净化 待免疫亲和柱内原有液体流尽后,将上述样液移至50 mL注射器筒内,调节下滴速度,控制样液以1 mL/min3 mL/min的速度稳定下滴。待样液滴完后,往注射器筒内加入10 mL水,以稳定流速,淋洗免疫亲和柱,重复淋洗2次。待水滴完后,用真空泵抽干亲和柱。脱离真空系统,在免疫亲和柱下部放置10 mL刻度试管,取下50 mL注射器筒,分4次分别使用0.5 mL 乙腈(4.1.1)洗脱亲和柱,控制流速在1 mL/min3 mL/min的范围内下滴,再用真空泵抽干亲和柱,收集全部洗脱液至试管中,在50下用氮气
13、缓缓地将洗脱液吹至近干,加入1.0 mL初始流动相, 涡旋30 s溶解残留物, 0.22 m滤膜过滤, 收集滤液于进样瓶中以备进样。 6.3 仪器测定 6.3.1 液相色谱参考条件如下: a) 色谱柱:C18柱,3.0 mm100 mm,粒径 5.0 m,或性能相当者; b) 流动相:A 为乙腈(4.1.1),B 为 0.1%甲酸水溶液,梯度洗脱(见表 1); c) 流速:0.3 mL/min; d) 柱温:40 ; e) 进样量:10 L。 表 1 流动相梯度洗脱程序 时间(min) 流动相 A(%) 流动相 B(%) 0 10 90 4.5 90 10 6.5 10 90 10.0 10
14、90 6.3.2 质谱参考条件 质谱参考条件列出如下: a) 检测方式:多离子反应监测(MRM); b) 离子源控制条件:参见表 2; c) 离子选择参数:参见表 3。 全国团体标准信息平台T/CAQI 272-2022 5 表 2 离子源控制条件 电离方式 ESI+ 毛细管电压/kV 3.5 锥孔电压/V 30 射频透镜 1 电压/V 14.9 射频透镜 2 电压/V 15.1 离子源温度/ 150 锥孔反吹气流量/(L/h) 50 脱溶剂气温度/ 500 脱溶剂气温度/(L/h) 800 电子倍增电压/V 650 表 3 离子选择参数表 化合物名称 母离子 (m/z) 定量离子 (m/z)
15、 碰撞能量 eV 定性离子 (m/z) 碰撞能量 eV 离子化方式 AFT B1 313 285 22 241 38 ESI+ 13C17-AFT B1 330 255 23 301 35 ESI+ 6.3.3 定性测定 试样中目标化合物色谱峰的保留时间与相应标准色谱峰的保留时间相比较, 变化范围应在 2.5之内。 每种化合物的质谱定性离子必须出现, 至少应包括一个母离子和两个子离子, 而且同一检测批次, 对同一化合物, 样品中目标化合物的两个子离子的相对丰度比与浓度相当的标准溶液相比,其允许偏差不超过表4规定的范围。 全国团体标准信息平台T/CAQI 272-2022 6 表 4 定性时相对
16、离子丰度的最大允许偏差 相对离子丰度/% 50 2050 1020 10 允许相对偏差/% 20 25 30 50 6.3.4 标准曲线的制作 在 6.3.1、6.3.2 的液相色谱串联质谱仪分析条件下,将标准系列溶液由低到高浓度进样检测, 以 AFT B1色谱峰与对应内标色谱峰的峰面积比值-浓度作图, 得到标准曲线回归方程,其线性相关系数应大于 0.99。 6.3.5 试样溶液的测定 取 6.2 处理得到的待测溶液进样,内标法计算待测液中目标物质的质量浓度,计算样品中待测物的含量。待测样液中的响应值应在标准曲线线性范围内。 6.3.6 空白试验 不称取试样,按6的试验步骤做空白实验。应确认不
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