T∕CVDA 4-2022 动物中东呼吸综合征冠状病毒中和抗体检测技术.pdf
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1、ICS 11.220 B 41 团体标准 T/CVDA 42022 动物中东呼吸综合征冠状病毒中和抗体检测技术 Detecting technique of neutralization antibody against MERS-CoV in animals 2022 - 07 - 19 发布 2022 - 07 - 25 实施 中国兽药协会中国兽药协会 发布发布 T/CVDA T/CVDA 42022 I 目 次 前言 . II 1 范围 . 1 2 规范性引用文件 . 1 3 缩略语 . 1 4 试剂和材料 . 1 5 器材和设备 . 2 5.1 器材 . 2 5.2 设备 . 2 6.
2、动物血清 . 2 6.1 样品采集 . 2 6.2 样品制备 . 2 6.3 样品处理 . 2 7 VNT 试验操作 . 2 7.1 安全防护 . 2 7.2 材料准备 . 3 7.3 检测操作 . 3 8 结果观察与判定 . 4 8.1 染色结果观察 . 4 8.2 结果判定 . 4 T/CVDA 42022 II 前 言 本标准按照GB/T 1.1-2020给出的规则起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任。 本标准由中国兽药协会提出并归口管理,由中国农业科学院哈尔滨兽医研究所起草。 本标准主要起草单位:中国农业科学院哈尔滨兽医研究所、宁夏大学、
3、中牧实业股份有限公司。 本标准主要起草人:步志高,刘任强,温志远,山丹,龚振兴,张蕾,华荣虹,葛金英,王喜军,王翀。 本标准为首次发布。 T/CVDA 42022 1 动物中东呼吸综合征冠状病毒中和抗体检测技术 1 范围 本标准规定了用于动物东呼吸综合征病毒血清中和抗体定量测定的病毒中和试验(VNT)的实验操作方法及结果判定标准。 本标准适用于动物血清中中东呼吸综合征冠状病毒中和抗体的定性检测和定量测定。 2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。 凡是注日期的引用文件, 仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB /
4、T 1.1-2020 标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则。 GB/T66822008 分析实验室用水规格和试验方法。 GB194892008 实验室生物安全通用要求。 GB14922-94:实验动物微生物学和寄生虫学检测等级(啮齿类和兔类)。 3 缩略语 下列缩略语适用于本文件。 MERS:中东呼吸综合征(Middle East respiratory syndrome); VNT:病毒中和试验(viral neutralization test); BSL-2:生物安全2级实验室(Biosafety Laboratory Level2); DMEM:细胞基础培养基(Dulb
5、eccos Eagles Minimum Essential Medium); PBS:磷酸盐缓冲液(Phosphate-Buffered Saline); TCID50:半数组织培养感染量(Median Tissue Culture Infective Dose); VSV:水泡性口炎病毒(Vesicular Stomatitis Virus); eGFP:增强绿色荧光蛋白(enhanced green fluorescent protein); S protein:纤突蛋白(spike protein)。 4 试剂和材料 除非另有规定,仅使用分析纯试剂。 4.1 水:GB/T6682-20
6、08,ddH2O。 4.2 中东呼吸综合征冠状病毒抗体阴性血清,为利用ELISA和RT-PCR方法验证均为阴性的骆驼阴性血清(由标制单位提供)。 4.3 中东呼吸综合征冠状病毒抗体阳性血清,为rLa-MERSs重组新城疫病毒两次免疫骆驼2w后收集的阳性血清(由标制单位提供)。 4.4 稀释用DMEM(见 A.1)。 4.5 细胞培养用DMEM(见 A.2)。 4.6 细胞培养用抗生素溶液(见 A.3)。 4.7 Vero E6细胞(由标制单位提供)。 T/CVDA 42022 2 4.8 重组水泡性口炎病毒毒株VSVG-MERSs-eGFP(由标制单位提供):以水泡性口炎病毒Indiana毒株
7、为载体,缺失自身G蛋白,同时表达中东呼吸综合征病毒S蛋白和eGFP,滴度应105.0TCID50/mL。 5 器材和设备 5.1 器材 5.1.1 8 道移液器 50 L200 L( 2%) 。 5.1.2 细胞培养板:96 孔微量平底培养板。 5.1.3 细胞计数器。 5.1.4 U 型底 96 孔板。 5.1.5 细胞培养瓶离心管(1.5 mL,15 mL,50 mL) ;吸头(20 L200 L) 。 5.2 设备 5.2.1 恒温培养箱:37 5%二氧化碳培养箱。 5.2.2 显微镜:倒置荧光显微镜。 5.2.3 冰箱:普通冰箱和超低温冰箱。 5.2.4 BSL-2 级生物安全柜。 5
8、.2.5 离心机。 5.2.6 恒温水浴箱。 6.动物血清 6.1 样品采集 动物血清采集时应做好个人防护(带 N95 口罩、手套,穿生物安全防护服) ,配备含 75%酒精、碘伏、止血绷带的应急处理箱。 6.2 样品制备 无菌静脉采集动物血液不少于2 mL, 37 静置60min。 4 放置1h至过夜后, 6000 r/min离心5 min,收集上清,-20 以下保存待检。样品采集应详细记录相关信息。 6.3 样品处理 采集和制备血清中的废弃物应置于生物安全垃圾袋内,集中高压处理。 7 VNT 试验操作 7.1 安全防护 本检测应在满足 GB19489-2008 的 BSL-2 级生物安全实验
9、室内进行。 进行本检测的人员应采取针对T/CVDA 42022 3 性防护措施(佩戴口罩、手套、着长袖工作服) 。废弃病毒液应弃于 0.1%氢氧化钠溶液中。 7.2 材料准备 7.2.1 细胞 Vero E6 细胞按照常规方法,用含 10%胎牛血清的 DMEM 液培养基在 37 5%二氧化碳培养箱中培养。1 个 75 cm2 的细胞培养瓶(15 mL 培养液)细胞刚长成单层后(4 106 个 /mL) ,可用于 4 块96 孔(细胞数为 1 104 个/孔)细胞培养板的检测。 7.2.2 检测用培养板 以 96 孔细胞培养板进行检测。提前 1624 h 将 Vero E6 细胞铺在 96 孔板
10、中,长成单层备用。 7.2.3 血清灭活 SPF 级小鼠免疫中东呼吸综合征冠状病毒 S 蛋白,三次免疫后无菌采血,制备阳性血清。未免疫SPF 级小鼠,无菌采血,制备阴性血清。待测血清、阳性血清、阴性血清在 56 下灭活 30min。灭活时,将血清样本放在 56 恒温水浴箱内,水面要高于血清液面,但不要超过试管高度。 7.3 检测操作 7.3.1 血清的稀释 7.3.1.1 在培养板上分别标记清楚待检血清、阳性血清、阴性血清对应样品编号,每个样品的同一个稀释度设 4 个重复,稀释直接在 U 型底 96 孔培养板中进行。 7.3.1.2 在 U 型底 96 孔板中加入 50 L 稀释用 DMEM。
11、第一行中加入 50 L 血清样品,每个样品共设 4个重复。 7.3.1.3 用 50 L 8 道移液器对血清样品进行连续的 2 倍稀释, 每个稀释度共设 4 个重复。 产生 1/2、 1/4、1/8、1/16、1/32、1/64、1/128、1/256 的稀释倍数。弃掉从最后一行孔中吸出的 50 L 液体。 7.3.2 病毒的回归滴定 7.3.2.1 在 U 型底 96 孔板进行病毒回归测定的稀释,第 110 每孔中加入 100 L 稀释用 DMEM,用于病毒滴度的回归测定;在第 1112 列中加入 150 L 稀释用 DMEM 用作细胞对照。 7.3.2.2 VSVG-MERSs-eGFP
12、病毒液在-80 及以下温度保存。用时取出 1 份,置于生物安全柜中融化,立即用稀释用 DMEM 将病毒稀释成 200TCID50/50 L,稀释总体积满足每个细胞培养板不少于 5 mL。 7.3.2.3 向病毒回归测定的稀释对照板第 1 列加入 100 L VSVG-MERSs-eGFP 病毒(400 TCID50) 。 7.3.2.4 病毒和培养基混匀后,从第 1 列吸取 100 L 加入到第 2 列,如此连续稀释至第 10 列。每稀释一次要更换一次吸头。 7.3.2.5 弃去第 10 列稀释的 VSVG-MERSs-eGFP 病毒液 50 L,弃于 0.1%氢氧化钠溶液中。 7.3.2.6
13、 弃去 96 孔细胞培养板中的培养基,将上述稀释好的病毒用 50 L 8 道移液器从高稀释毒向低稀释度依次加入细胞培养板中,每孔加 50 L。37作用 1h 后再补细胞培养用 DMEM,每孔加 100 L,从病毒高稀释孔向病毒低稀释孔依次加入。 7.3.3 病毒与血清的中和 7.3.3.1 病毒的加入 待测血清样品测定板内全部各孔均加入 7.3.2.2 稀释的 VSVG-MERSs-eGFP 病毒 50 L(200TCID50) 。 用 8 道移液器加入病毒液, 从血清稀释倍数低的孔向血清稀释倍数高的孔的方向依次加入病毒液,并且吸头不应接触液面。加入病毒后以培养板盖盖好。 7.3.3.2 中和
14、 将上述全部培养板从生物安全柜中取出,置 37 温箱中,中和 6090 min(最多不超过 90 min) 。 T/CVDA 42022 4 7.3.4 弃去 96 孔细胞培养板中的培养基,将血清与病毒中和后的样品对应加入 96 孔细胞培养板中,每孔 50 L。加样时用 8 道移液器加样,从血清稀释倍数低的孔向血清稀释倍数高的孔的方向依次加入血清和病毒的混合样品。 7.3.5. 将细胞培养板放入细胞培养箱中作用 1h 后, 每孔补加 100 L 细胞培养用 DMEM, 从血清低稀释孔向血清高稀释孔依次加入。 7.3.6 培养 全部培养板置 37 5%二氧化碳培养箱中培养 48 h。 8 结果观
15、察与判定 8.1 染色结果观察 8.1.1 观察顺序 按病毒回归滴定板、血清对照样、待测血清样顺序观察。 8.1.2 观察结果记录 在荧光显微镜下观察荧光情况,观察每孔所有视野,依次记录病毒回归滴定结果、细胞对照、培养基对照、阴性血清对照、阳性血清对照及待测血清结果。 8.2 结果判定 8.2.1 判定成立条件 病毒回归滴定结果的计算值应介于 100300 TCID50/50L 之间;细胞对照、培养基对照、阴性血清对照、阳性血清对照均成立。 8.2.2 结果判定 当细胞对照、培养基对照、阴性血清对照、阳性血清对照均成立时,方可进行判定,判定时间为培养 48 h。被检血清孔 50%荧光被抑制,判
16、为阳性,如低于 50%判为阴性。血清能够抑制 50%荧光的最高稀释倍数,判定为该血清的中和抗体滴度。当中和抗体滴度8 时判为阳性。 T/CVDA 42022 5 附录 A (规范性附录) 溶液配制 A.1 稀释用 DMEM 培养基 无菌量取 DMEM 培养 990mL,抗生素溶液(见 A. 3 ) 10mL。4 保存。 A.2 细胞培养用 DMEM 培养基 无菌量取 DMEM 培养基 870 mL,加入胎牛血清 100 mL、100 mM/L L-谷氨酰胺 20 mL、抗生素溶液(见 A.3) 10 mL。4 保存。 A.3 细胞培养用抗生素溶液 以 DMEM 培养基溶解市售抗生素,达到青霉素
17、浓度 100 IU/mL链霉素浓度 100 mg/mL,分装后-20 保存。 T/CVDA 42022 6 附录 B (资料性附录) 中东呼吸综合征冠状病毒纤突蛋白基因序列 B.1 中东呼吸综合征冠状病毒纤突蛋白基因序列 ATGATACACTCAGTGTTTCTACTGATGTTCTTGTTAACACCTACAGAAAGTTACGTTGATGTAGGGCCAGATTCTGTTAAGTCTGCTTGTATTGAGGTTGATATACAACAGACTTTCTTTGATAAAACTTGGCCTAGGCCAATTGATGTTTCTAAGGCTGACGGTATTATATACCCTCAAGGCCGTACA
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