抗菌药物敏感试验课件.ppt

单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,1,抗菌药物敏感性概述,抗菌药物敏感性试验方法,全国,“,细菌耐药监测网,”,简介,2,敏感和耐药的概念,从本质上讲：,细菌对某种抗菌药物是敏感还是耐药，,常以该抗菌药物的,治疗浓度,与,MIC,的关系而定。,常用剂量的抗菌药物通过常用途径所能达到的,血药浓度,3,血药浓度与,MIC,之间的关系,敏感,中介耐药,耐药,上限,下限,4,抗菌药物的,治疗浓度,与,MIC,的关系：,若,MIC,小于,治疗浓度，,则为“,敏感,”（,Sensitive,S,），推荐使用。,若,MIC,大于,治疗浓度，,则为“,耐药,”（,Resistant,R,）；,若,MIC,介于治疗浓度的上下限之间,，,则为“,中度,耐药,”（,Intermediate,I,）或中度敏感,敏感和耐药的概念,5,6,敏感,治疗浓度的上限即表中的,R,治疗浓度的下限即表中的,S,耐药,中介,耐药,治疗浓度,CLSI,标准,MIC,7,第一节、,抗菌药物敏感性试验方法,需氧和兼性厌氧菌,8,稀释法,肉汤稀释法（试管稀释法）,琼脂稀释法（平板稀释法）,纸片扩散法（纸片法）,E-,试验,联合药物敏感试验,需氧和兼性厌氧菌药敏试验的方法,9,稀释法的特点,定量,的药敏试验，,测定,MIC,、,MBC,。,方法比较繁琐，手工操作一般不作为常规试验，常用于调查罕见耐药。,自动微生物鉴定药敏分析系统,采用微量稀释法检测,MIC,。,10,二、纸片扩散法（,disc diffusion test),（,Kirby-Bauer,法）,原理：,将,浸有抗菌药物的纸片,贴在涂有测试菌的琼脂平板上。抗菌药物向琼脂四周扩散形成,递减的梯度浓度,。,药物敏感细菌在纸片周围一定距离内的生长受到抑制，形成,抑菌圈,。,抑菌圈的大小反映测试菌,对,药物的敏感程度,。,二者呈正相关。,11,抑菌圈边缘的药物浓度,与,MIC,12,抑菌圈的大小与,MIC,：,二者呈负相关，即抑菌圈愈大，,MIC,愈小。,13,纸片法药敏试验抑菌圈直径与结果解释的标准,抗菌药物与细菌,纸片含量,抑菌圈直径,：,mm,相应,MIC g/ml,耐药 中介度 敏感 耐药 敏感,丁胺卡那霉素,30g 14 15-16 17 32 16,氨苄青霉素,测肠杆菌,10g 11 12-13 14 32 8,测葡萄球菌,10g 28 29,测嗜血杆菌,10g 19 20 4 0.25,测肠球菌,10g 16 16 2,14,操作方法：,1.,制备,M-H,琼脂平板，厚度,4mm,。,2,.,制备,0.5,麦氏,比浊管浊度的菌液,（培养,16,24h,，,4,5,个菌落）。,3.,菌液均匀涂布于平板。（,15,分钟接种完毕）,4.,无菌贴标准抗生素纸片于,M-H,琼脂表面，,5.,经过,3516,24h,孵育。,6.,量取抑菌环直径,，,根据,CLSI,标准，,报告细菌对该抗生素敏感、耐药、中介,。,15,操作方法,：,1.,将在约,56,恒温的无菌,M-H,琼脂倾注直径为,90mm,的平板，其厚度,4mm,。,16,2.,无菌挑取孵育,16,24h,的血平板上,4,5,个菌落。,17,3.,将菌置于无菌生理盐水中，校正其浊度于,0.5,麦氏,比浊管浊度的菌液。,1.510,8,CFU/ml,18,4.,用无菌棉签浸入细菌悬液中，将拭子在试管上壁轻轻挤压以挤去过多的菌液。棉签在,三个方向均匀抹,琼脂表面（每次转,60,）使菌液均匀分布，最后沿平板内缘涂抹一周。,19,5.,盖上平板的盖子，放置培养箱内孵育，放置,310,分钟,后贴上标准抗生素纸片。,20,6,.,用无菌镊子或纸片分配器将抗菌纸片粘贴于,M-H,琼脂的表面，一旦纸片贴上，不能移动；各抗菌纸片中,心距离应大于,24mm,，纸片距平板内缘应大于,15mm,。,21,7.,经过,3516,24h,孵育。,8.,取抑菌环直径，,根据,CLSI,标准，报告细菌对该抗生素敏感、耐药、中介。,22,纸片扩散法,质量控制,培养基：,M-H,平板厚度，,4 mm,细菌悬液：,0.5,麦氏标准的细菌浓度,药敏纸片的质量,各抗菌纸片中心距离应大于,24mm,，,纸片距平板内缘应大于,15mm,。,9cm,的平板贴,6,个,培养时间,质控菌株,抑菌圈直径？,23,24,根据抑菌圈的直径，依照,CLSI,标准，作出敏感、耐药、和中介的判断。为,定性”结果。,CLSI,推荐的最简单的药敏试验。,纸片扩散法的特点,25,三、,E,试验法,（浓度梯度法）,原理：,E,试条是,一条,5mm,50mm,无孔,试剂载体,，一面固定有一系列预先制备的,浓度呈连续指数增长的抗菌药物,，另一面有判别的,刻度,。抗菌药物的梯度可覆盖有,15-,20,个对倍稀释浓度,的宽度范围。,将,E,试条放在细菌接种过的琼脂平板上，经孵育，围绕试条明显可见椭圆形抑菌圈，,圈的边缘与试条交点的刻度浓度即为抗菌药物抑制细菌的,MIC,。,依照,CLSI,标准判断其敏感、耐药、中介。,256,128,8,016,26,无菌生长区,有菌生长区,27,椭圆形细菌生长抑制区,256,128,8,016,判读抑菌浓度,（,MIC ug/ml),28,29,30,E test,法,特点,优点,连续浓度梯度，与琼脂稀释法相关性好（相关系数为,0.9,）,.,可测,MIC,。,操作简单，影响因素少，稳定性高。,缺点：,E,试条较昂贵,;,不适用于生长缓慢的苛养菌。,31,用于病原菌尚未确定的急、重症感染的经验治疗,以扩大病原治疗的覆盖面,治疗多种细菌所引起的混合感染,对于某些耐药菌可取得协同抗菌作用,减少或推迟治疗过程中细菌耐药性的产生,避免药物达到毒性剂量。,四、联合药物敏感试验,联合药物意义,32,增强作用：,两种抗生素联用的效果,大于,它们单独使用时的效果之和；,20,25,相加作用,：它们联用时的效果,等于,单用两种抗生素效果之和；,60,70,无关作用：,两种抗生素联用的效果，,仅相当于其中一种,具有较强作用的抗生素的效果；,拮抗作用：,两种抗生素联用时的效果,反而小于,它们分别使用时的效果之和。,10,15,两种药物的联合使用的效果,33,两种抗菌药物作用部位不同：,内酰胺类抗生素（抑制细菌细胞壁合成）与氨基糖苷类抗生素（干扰细菌的代谢）。,增强作用：,增加了药物进入细菌细胞,杆菌肽（降低细胞通透性）与氨基糖苷类药物（干扰细菌的代谢）。,拮抗作用：,降低了药物进入细菌细胞,抗菌药物协同作用发生原理,34,棋盘稀释法,利用肉汤稀释法原理，依据两种药物的,MIC,，以棋盘设计两种药物不同浓度的组合。,计算抑菌浓度指数（,fraction inhaibitory concentration,FIC,),联合药物敏感试验方法,35,棋盘稀释法,首先分别测定拟联合的抗菌药物对检测菌的,MIC,。,药物最高浓度为,MIC,的,2,倍，对倍稀释。,两种药物的稀释分别在方阵的纵列和横列进行，,这样在每管（孔）中可得到不同浓度组合的两种药物混合液。,接种菌量为,5,10,5,CUF,ml,，,35,孵育,18h,后观察结果。,计算部分抑菌浓度（,FIC,）指数。,36,抑菌浓度指数（,FIC,）,FIC,A,药联合时的,MIC,A,药单测的,MIC,B,药联合时的,MIC,B,药单测的,MIC,FIC 0.5,为协同作用；,0.5,1,为相加作用；,1,2,为无关作用；,2,为拮抗作用,37,A,药：,32 16 8 4,B,药,:16,8,4,2,生长,生长,生长,生长,生长,生长,生长,生长,生长,生长,生 长,38,药敏试验方法的比较,K-B,法：,WTO,推荐使用的最简单的,定性药敏试验,。,稀释法：,准确测定,MIC,、,MBC,，比较繁琐，试管法一般不作为常规试验。,微生物自动分析系统采用微量稀释法原理,。,E,试验：,可测定,MIC,。,39,第二节 结核分枝杆菌的药敏试验 （了解）,首次分离的分枝杆菌需做药敏试验，有助于合理用药和监测药物敏感性。,另外经过三个月正规治疗，标本分离培养仍为阳性患者，或感染的严重疾患（如播散性结核病和结核性脑膜炎）。,以及来自高耐药流行区的患者，均须做体外药敏试验。,40,四种方法,比例法,放射同位素法,绝对浓度法,耐药率法,直接法：直接采用图片阳性的体液标本。（须经充分消化五杂菌）,间接法：经分离纯培养后的次代培养菌。,41,无药,药,2,药,3,药,1,Middlebrook7H10,琼脂,培养,3,周,间接比例法（,WHO,推荐）,敏感：含药格无结核杆菌生长，,或菌落数,1%,对照格,耐药：含药格菌落数,1%,对照格。,不含药的对照格菌落数应为,50150,4,格平板,42,分枝杆菌微量直视,快速药敏试验法,4000,倍,43,培养,72h,观察结果,INH,敏感,RFP,耐药,阳性对照,阴性对照,44,第三节 厌氧菌体外药敏试验 （了解）,厌氧菌感染多为内源性感染，厌氧菌药物敏感性稳定，一般不做体外药敏试验。,下述情况应考虑药敏试验：,明确厌氧菌引起的严重感染；,已确证的厌氧菌感染，经验性选药治疗未能奏效；,需长期用药的厌氧菌感染。,45,基本原理和方法与需氧菌相同，只是在培养基、操作环境和培养条件等应根据厌氧菌的特定需要变动。,培养基为布氏血琼脂再加人补充剂,5g/ml,氯化血红素，,5,脱纤维羊,1g/ml Vit K,。,厌氧孵育条件,质控菌株为脆弱类杆菌,ATCC25285,。,厌氧菌体外药敏试验,46,药敏试验结果的临床价值,影响抗菌药物临床疗效的因素很多，据报道药敏试验结果与临床疗效的,符合率约为,70%,，,因此细菌培养及药敏试验报告只能作为临床用药的参考，应根据患者用药后的治疗反应和临床病情及时调整用药。,医学检验的灵魂是与临床沟通。,47,新的药敏试验方法探索,流式细胞术检测抗生素最低抑菌浓度,分枝杆菌药物最低抑菌浓度的快速测定方法研究,48,细菌耐药性的发生过程：,细菌获得与耐药相关的基因,编码与耐药有关的蛋白,表现出对某种抗生素的耐药,基因：,537,表型：书,533,页,敏感性,49,第,35,章第三节细菌耐药性检测,50,生物化学技术检测,酶,的等电点,(,等电聚焦电泳,),头孢哨噻吩滤纸片法,碘淀粉测定法,分析酶的底物谱及抑制物谱,纸片法和稀释法,1,、,-,内酰胺酶检测,临床意义：产,ESBL,克雷伯菌和大肠埃希菌对青霉素、头孢菌素和氨曲南治疗无效。,一、耐药表型检测,51,G,-,菌产生的头孢菌素酶检测,-,头孢哨噻吩滤纸片法,用接种环挑取受试菌于,头孢哨噻吩（产色头孢菌素）,滤纸片上,(,商品化,),，,10,分钟内由浅黄色转变为粉红色即阳性结果，表示头孢菌素的,-,内酰胺环被酶打开。,临床意义：产生该酶的细菌对头孢菌素类抗生素耐药。,52,G,+,菌产生的,青霉素酶检测,-,碘淀粉测定法,受试菌混于青霉素溶液，振摇,30,分钟。加入淀粉液后，再加入碘液，溶液变蓝，继续振摇。,10,分钟之内蓝色消失者为产酶株。,青霉素酶,青霉素,青霉素噻唑酸,碘,碘淀粉复合物变为无色,多为金黄色葡萄球菌产生，对青霉素,G,耐药。,53,超广谱,-,内酰胺,酶,Extended-Spectyum-Lactamase,，,ESBL ESBL,s,能水解青霉素类，头孢菌素和氨曲南。,不能水解碳青烯酶类，如亚胺培南,多数可被,内酰胺酶抑制剂（如克拉维酸，三唑巴坦及舒巴坦）所抑制。,如为,ESBL,阳性，则对,青霉素类，头孢菌素和氨曲南均,报告,耐药，不考虑体外药敏结果。,54,常见,产,ESBLs,菌株,最常见,是肠杆菌科细菌（,大肠埃希氏菌、肺炎克雷伯氏菌）,；,其次，阴沟肠杆菌、粘质沙雷氏菌、弗劳地枸橼酸菌、铜绿假单胞菌、,奈瑟菌等,。,55,ESBLs,的临床意义,对产,ESBLs,菌株，目前最有效的抗生素为碳青霉烯类（泰能），其次，头孢西丁及含酶抑制剂的复合剂、氨基糖甙类部分有效。,若临床出现产,ESBLs,菌株，会在病人和医院之间及不同菌株间相互传播，应引起充分的重视。,56,纸片初筛：,培养基：,Muller-Hinton,琼脂,药敏纸片,接种：按标准纸片扩散法,孵育：,35,大气环境，,16-18,小时,结果：头孢泊肟（,10ug,片）抑菌环,22mm,头孢他啶（,10ug,片）抑菌环,22mm,氨曲南 （,30ug,片）抑菌环,27mm,头孢噻肟（,30ug,片）抑菌环,27mm,头孢曲松（,30ug,片）抑菌环,25mm,超,-,内酰胺酶检测,纸片扩散法,ESBLs,的底物,可能产生,ESBLs,57,培养基：,Muller-Hinton,琼脂,药敏纸片浓度：,头孢噻肟,30ug,、,头孢噻肟,/,克拉维酸,30ug/10ug,头孢他啶,30ug,、,头孢他啶,/,克拉维酸,30ug/10ug,接种：按标准纸片扩散法,孵育：,35,大气环境，,16-18,小时,结果：,复合制剂药物纸片的抑菌圈直径,比非复合制剂药物纸片的直径,5mm,以上者为产,ESBLs,菌。,ESBLs,的底物,ESBLs,的抑制剂,(1),纸片确证试验：,58,混合克拉维酸药物纸片,无,克拉维酸,药物纸片的直径,直径差,5 mm,：,ESBL,59,筛选试验：,选用头孢泊肟、头孢他啶、氨曲南、头孢噻肟或头孢曲松至少,2,种以上，,用标准肉汤稀释法稀释至,1,g,/ml,凡被测菌在上述各管中能够生长,(,MIC2g/ml,),，高度怀疑为,ESBLs,，应进一步作确认试验来加以确诊。,（,2,）液体稀释法,60,确认试验：,用标准肉汤稀释法测定,MIC,的方法,头孢噻肟单独稀释,(0.25,64,g,/ml),及,头孢噻肟,(,稀释范围相同,),加克拉维酸,(,每管,4,g,/ml);,头孢他啶单独稀释,(0.25,128,g,/ml),及,头孢他啶加克拉维酸,(,每管,4,g,/ml),上述,2,种药物必须同时进行试验,结果加克拉维酸和不加克拉维酸的,MIC,差值,8,倍,(3,个稀释度,),，可确认为,ESBLs,菌株。,（,2,）液体稀释法,61,二、细菌耐药基因检测,基因检测方法检测细菌耐药性的优缺点,抗生素耐药性的基因检测方法,基因检测方法的应用,62,基因检测细菌耐药性的优点：,能早期指导临床医生治疗用药。,分子遗传学方法可以直接从临床标本入手，无需菌株的培养，极大地节省时间，,减轻实验室生物危险性。,有助鉴别那些处于中介水平或常规药敏结果模棱两可的结果。,分子生物学方法被认为是“金标准”。,在细菌耐药性的流行病追踪调研中，耐药基因检测比抗生素敏感方法更准确。,发现新的耐药基因。,63,基因检测方法检测抗生素耐药性的缺点：,当样品中菌量很少时，其敏感性会大大降低。,对每一个测试的抗菌药物，均需要设计相应的分子检测方法，一次只能检测一种耐药机制。,目前仍有许多耐药机制是未知的，无法进行分子检测。,耐药基因的检测也会存在假阳性问题。,对许多耐药基因的检测方法，,目前还缺乏临床对照研究以评价其准确性、重复性及临床应用价值。,64,常见的细菌耐药相关基因举例,基 因,耐药抗生素,细菌种类,基因大小,bp,Ant(4,）,氨基糖苷类,金黄色葡萄球菌,473,ant,（,6,)-la,氨基糖苷类,粪肠球菌,470,mec A,内酰胺类,金黄色葡萄球菌,400,blaTEM,一内酰胺类,大肠埃希菌,424,cat D,氯霉素,艰难杆菌,270,65,耐药基因检测方法：,分子方法检测耐药基因的基础是,PCR,。,在,PCR,基础上发展的方法：,分子杂交、,DNA,序列分析，,基因微振列技术等。,66,PCR-,序列特异性引物扩增,耐药基因,标 本,提取,DNA,PCR,扩增目的基因,DNA,琼脂糖凝胶电泳,结果分析,1 2 3 4,1 2 3 4,耐药基因的的特异性引物,理想的靶序列应当是耐药基因的编码区域，而非编码区外的基因,(,如插入序列或启动子序列,),。,特异性高，需要设立阴性对照。,67,基因芯片技术,芯片制备：以玻璃片或硅片为载体，采用原位合成和微矩阵的方法将寡核苷酸片段或,cDNA,作为探针按顺序排列在载体上。,样品制备：生物样品往往是复杂的生物分子混合体，须将样品进行提取、扩增，获取其中的蛋白质或,DNA,、,RNA,，然后用荧光标记，以提高检测的灵敏度和使用者的安全性。,杂交反应：即荧光标记的样品与芯片上的探针进行反应产生一系列信息的过程。,信号检测和结果分析：杂交反应后的芯片上各个反应点的荧光位置、荧光强弱经过芯片扫描仪和相关软件可以分析图像，将荧光转换成数据，即可以获得有关生物信息。,68,结核菌耐药基因突变检测液芯,69,“,细菌耐药监测网,”,简介,监测从住院、门诊病人分离的细菌耐药状况。,分析住院病人抗菌药物的使用情况和门诊药品的使用情况。,系统、连续地收集资料，定量分析、报告,抗菌药物敏感性、耐药性的发生和分布,，为制定、评估诊疗指南，如经验性治疗方案、感染控制措施等，提供有用信息。,70,71,网上细菌耐药检测检索,72,广东医学院附属医院细菌耐药性分析,2009,年上半年我院细菌培养耐药性分析,2009年上半年全院各类标本主要病原菌的耐药性,痰标本主要病原菌的耐药性,尿标本主要病原菌的耐药性,血液标本主要病原菌的耐药性,多重耐药菌株医院感染监控制度,？临床科室更加直观地对自己科室感染细菌的耐药性情况有直接的了解。,某一科室,主要病原菌的耐药性,某,类标本主要病原菌的耐药性,某一细菌的耐药情况,细菌耐药性分析趋势,73,细菌耐药 小结,举例说明抗菌药物的作用机制。,举例说明细菌耐药的生化机制。,分析抗菌药物的作用及细菌对抗菌药物耐药的相关性。,简述,内酰胺类抗生素的杀菌机制及细菌对该类药物的耐药机制。,BPP,ESBLs,74,细菌,获得性耐药产生的机制,基因突变，获得外源基因（，）,说明质粒、整合子、转座子在细菌耐药播散中的作用。,药物敏感试验的意义、方法及特点。,联合用药可能出现的结果,质量控制,解释名词：,AST,，,MIC,，,MBC,，,S,，,R,，,I,，,Tn,