DB37_T 4686—2023海洋生物体中金刚烷胺的测定_液相色谱串联质谱法.docx
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1、ICS67.120.30CCSB 5037 山东省地方标准DB37/T 46862023海洋生物体中金刚烷胺的测定 液相色谱- 串联质谱法Determination of amantadine in marine organismsLiquid chromatography tandemmass spectrometry2023 - 12 - 28 发布2024 - 01 - 28 实施山东省市场监督管理局发 布目次前言II1 范围12 规范性引用文件13 术语和定义14 原理15 试剂及配制16 仪器和设备27 样品28 分析步骤39 结果计算与表示410 准 确度512 废物处置5附录 A
2、(资料性) 色谱图6附录 B(资料性) 方法的准确度811 质量控制和质量保证5前言本文件按照GB/T 1.12020标准化工作导则 第1部分:标准化文件的结构和起草规则的规定起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别专利的责任。本文件由山东省海洋局提出并组织实施。 本文件由山东省海洋标准化技术委员会归口。 海洋生物体中金刚烷胺的测定 液相色谱-串联质谱法警告:实验中使用的标准溶液、有机溶剂等均具有一定的毒性和挥发性,实验人员应避免与其直接接触,样品前处理过程应在通风橱中进行。1 范围本文件描述了海洋生物体中金刚烷胺液的液相色谱-串联质谱测定方法,包括原理、试剂及配
3、制、仪器和设备、样品、分析步骤、结果计算与表示、准确度、质量控制和质量保证、废物处置等。 本文件适用于海洋生物体鱼、虾、海参、海带和贝类中金刚烷胺的测定。当称样量为3.00 g时,金刚烷胺检出限为0.5 g/kg,测定下限为1.0 g/kg。2 规范性引用文件下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用文件, 仅该日期对应的版本适用于本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。 GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 3 术语和定义本文件没有需要界定的术语和定义。 4 原 理海洋生物体样品用1%乙酸乙腈提取后,经固相萃
4、取柱净化,液相色谱-串联质谱仪测定,内标法定量。 5 试剂及配制5.1 实验室用水:GB/T 6682,一级。 5.2 甲醇(CH3OH):色谱纯。 5.3 甲酸(HCOOH):色谱纯。 5.4 乙腈(CH3CN):色谱纯。 5.5 氨水(NH4OH):优级纯。 5.6 乙酸(CH3COOH):优级纯。 5.7 1%乙酸乙腈溶液(体积分数)。 取1 mL乙酸,用乙腈定容至100 mL。 5.8 5%氨水甲醇溶液(体积分数)。 取5 mL氨水,用甲醇定容至100 mL。 5.9 0.1%甲酸溶液(体积分数)。 取0.10 mL甲酸,用水定容至100 mL。 5.10 0.1%甲酸乙腈定容液(体积
5、分数)。 将1 mL甲酸与300 mL乙腈,加入到700 mL水中。 5.11 金刚烷胺标准品:CAS 号 768-94-5,纯度大于 99.0%。 5.12 D15-金刚烷胺内标溶液:CAS 号 33830-10-3,1 mg/mL。 5.13 金刚烷胺标准贮备液。 称取金刚烷胺0.010 0 g,用乙腈溶解,并定容至10 mL,配制成1.0 mg/mL标准贮备液,-20 下避光保存,有效期为90 d。 5.14 金刚烷胺标准工作液。 移取100 L金刚烷胺标准贮备液(5.13),用乙腈溶解,并定容至100 mL,配制成1.0 g/mL标准工作液,4 下避光保存,有效期为30 d。 5.15
6、 D15-金刚烷胺内标标准中间液。 移取100 L D15-金刚烷胺内标溶液(5.12),用乙腈溶解,并定容至100 mL,配制成1.0 g/mL内标标准中间液,4 下避光保存,有效期为30 d。 5.16 D15-金刚烷胺内标标准工作液。移取1 mL D15-金刚烷胺内标标准中间液(5.15),用乙腈定容至10 mL,配制成100 g/L内标标准工作液,4 下避光保存,有效期为7 d。6 仪器和设备6.1 液相色谱-串联质谱仪:配电喷雾电离源(ESI 源)。 6.2 天平:感量分别为 0.01 g 和 0.000 1 g。 6.3 均质机。 6.4 高速离心机:10 000 r/min。 6
7、.5 超声波清洗器。 6.6 涡旋混合器。 6.7 固相萃取装置。 6.8 固相萃取柱:MCX(混合型阳离子固相萃取柱),60 mg/3 mL,或相当者。 6.9 氮吹仪。 6.10 聚丙烯离心管:50 mL。 6.11 滤膜:聚偏氟乙烯滤膜,孔径为 0.22 m。 7 样 品7.1 制备鱼,去鳞、去皮,沿脊背取肌肉,将鳞、皮单独收集;虾,去头、去壳、去肠腺,取肌肉部分;海参、海带、贝等取可食部分,样品充分搅碎、混匀。如不能及时检测,-18 以下冷冻保存备用。取适量新鲜或解冻的空白或供试组织,绞碎,并使均质。 7.2 提取称取3.00(0.01)g样品至50 mL离心管中,加入100 L内标标
8、准工作液(5.16)和15 mL 1%乙酸乙腈溶液(5.7),涡旋30 s,超声提取15 min,8 000 r/min离心10 min,待净化。 7.3 净化MCX固相萃取柱经6 mL甲醇(5.2)和6 mL水(5.1)活化后,取5 mL上清液移入固相萃取柱,3 mL水(5.1)淋洗,6 mL 5%氨水甲醇溶液(5.8)洗脱,全程控制流速为2 mL/min3 mL/min。收集洗脱液, 用氮吹仪于40 下吹至近干,用定容液(5.10)定容至1 mL,过滤膜,供液相色谱-串联质谱仪分析。 7.4 空白试样的制备除不加试料外,均按上述测定步骤进行。 8 分析步骤8.1 液相色谱质谱条件8.1.1
9、 液相色谱条件: a) 色谱柱:C18 (100 mm2.1 mm,1.8 m),或相当者; b) 色谱柱温度:40 ; c) 流速:0.25 mL/min; d) 进样量:10 L; 表1 流动相梯度洗脱程序表8.1.2 质谱条件: a) 离子化模式:ESI+; b) 电离电压:2.50 kV; c) 锥孔电压:25 V; d) 离子源温度:140 ; e) 锥孔反吹气流速:50 L/h; f) 脱溶剂气温度:400 ; g) 脱溶剂气流速:700 L/h; h) 氩气流速:0.12 mL/min; i) 测定方式:选择反应监测模式(SRM),定量离子和定性离子参数见表 2。 e) 流动相:
10、A 为乙腈(5.4);B 为 0.1%甲酸溶液(5.9);流动相梯度洗脱程序见表 1。 时间 min 流速 mL/min 流动相A % 流动相B % 0.00 0.25 5 95 0.50 0.25 5 95 0.60 0.25 95 5 5.00 0.25 95 5 5.10 0.25 5 95 7.00 0.25 5 95 表2 待测物定量离子和定性离子参数化合物 母离子 m/z 子离子 m/z 锥孔电压 V 碰撞能量 eV 金刚烷胺 152 93 25 30 135a 25 17 金刚烷胺内标 167 141a 25 17 a 表示定量离子 8.2 标准曲线的建立移取金刚烷胺标准工作液(
11、5.14)10 L、20 L、40 L、50 L、100 L于进样瓶中,分别加入100 L 内标标准工作液(5.16),用定容液(5.10)定容至1 mL,使金刚烷胺浓度分别为10.0 g/L、20.0 g/L、40.0 g/L、50.0 g/L、100 g/L,现用现配。以各标准工作液金刚烷胺峰面积与内标峰面积的比值为纵坐标,以各标准工作液浓度为横坐标,绘制标准曲线。 8.3 试样测定按照仪器条件(8.1),分别测定金刚烷胺标准工作液(8.2)、试样(7.3)、空白试样(7.4), 金刚烷胺标准溶液、空白样品和加标样品的色谱图参见附录A。 9.1 定性分析在同样测试条件下,阳性样品的保留时间
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