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DB37_T 3374-2018 玉米粗缩病病原检测技术规程-(高清现行).pdf
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1、ICS 65.020 B 01 DB37 山东省地方标准 DB 37/T 33742018 玉米粗缩病病原检测技术规程 Technical regulation for pathogen detection of maize rough dwarf disease 2018-07-19 发布 2018-08-19 实施 山东省质量技术监督局 发 布 前 言 本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。本标准由山东省农业厅提出。本标准由山东省农业标准化技术委员会归口。本标准主要起草单位:山东省农业科学院植物保护研究所。本标准主要起草人:姜珊珊、辛相启、王升吉、吴斌、张眉、辛志梅。玉米粗缩
2、病病原检测技术规程 1 范围 本标准规定了玉米粗缩病主要病原水稻黑条矮缩病毒的间接ELISA、Dot-ELISA和普通RT-PCR检测方法。本标准适用于山东省玉米粗缩病病原水稻黑条矮缩病毒在传播介体灰飞虱和玉米中的检测。2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 GB/T 14926.50 实验动物 酶联免疫吸附试验 SN/T 1193 基因检验实验室技术要求 SN/T 2964 植物病毒检测规范 SN/T 16
3、66 水稻条纹病毒、水稻矮缩病毒、水稻黑条矮缩病毒的检测方法 普通RT-PCR方法和实时荧光RT-PCR方法 3 术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。3.1 玉米粗缩病 Maize rough dwarf disease,MRDD 一种爆发流行性病毒病害,在山东其主要病原为水稻黑条矮缩病毒。玉米感染粗缩病后,节间粗短、生长迟缓、病株矮化;叶背、叶鞘上出现粗细不等的蜡白色条状突起;心叶不易抽出且变小,叶片宽短僵直,叶色浓绿,顶部叶片簇生;雄穗、雌穗发育不良,畸形不实或籽粒减少,严重影响玉米的产量。3.2 水稻黑条矮缩病毒 Rice black-streaked dwarf virus,RBS
4、DV 呼肠孤病毒科(Reoviridae),斐济病毒属(Fijivirus),病毒粒子、传播途径及危害:病毒粒体球状,直径70 nm75 nm,具有双层外壳蛋白,病毒基因组由10片段双链RNA组成,在自然界中以灰飞虱传毒为主,导致寄主植物矮化、沿叶脉瘤肿等症状,主要侵染禾本科植物。3.3 灰飞虱 Small Brown Planthopper,SBPH 拉丁名为Laodelphax striatellus,属同翅目,飞虱科,寄主植物主要有水稻、小麦、玉米、高粱、禾本科杂草等禾本科植物,是水稻黑条矮缩病毒的主要传播介体,以持久性不经卵方式传播病毒,1代成虫发生量与带毒率是影响玉米粗缩病发生流行的
5、关键因素。3.4 酶联免疫吸附测定 enzyme linked immunosorbent assay,ELISA 具体描述参照GB/T 14926.50。3.5 间接酶联免疫吸附测定 indirect enzyme linked immunosorbent assay,IELISA 简称IELISA,首先用样品中抗原包被于固相载体,经洗涤,加入相应病毒的抗体,形成待测抗原-抗体复合物,再经孵育洗涤后,加入酶标记二抗,形成固相抗原-抗体-酶标二抗复合物,测定加底物后的显色程度,确定待测抗体含量。3.6 斑点酶联免疫吸附测定 dot enzyme linked immunosorbent ass
6、ay,Dot-ELISA 以纤维素膜代替免疫酶固相载体法中常用的聚苯乙烯微量反应板而建立的一种免疫检验方法。不仅保留了常规ELISA的优点,而且还弥补了抗原或抗体对载体包被不牢等不足,所以具有敏感性高,特异性强,被检样品用量少,节省材料,不需特殊仪器,结果判定简单易行和便于长期保存等特点。Dot-ELISA的基本原理与常规ELISA基本相同,即将抗原或抗体首先吸附在纤维素薄膜(如硝酸纤维素膜)表面,并保持其免疫活性,通过与相应的抗体或抗原和酶标记物的一系列免疫反应,形成酶标记抗原抗体复合物,在底物的参与下,结合物上的酶催化底物使其水解、氧化成另一种带色物质,沉着于抗原抗体复合物吸附的部位,呈现
7、出肉眼可见的颜色斑点。试验的结果通过颜色斑点的出现与否和色泽深度进行判定。3.7 逆转录-聚合酶链式反应 reverse transcription polymerase chain reaction,RT-PCR 简称RT-PCR。具体描述参照SN/T 1666。4 方法原理 水稻黑条矮缩病毒的血清学特性与分子生物学特性是该病毒检测方法的主要依据。RBSDV具有很强的免疫原性,同时属于RNA病毒,因此可利用间接ELISA、Dot-ELISA和RT-PCR方法确定样品中是否带有该病毒。5 主要仪器设备、用具和试剂 5.1 仪器和设备:a)酶标仪;b)洗板机;c)电子天平(感量 0.001 g)
8、;d)PCR 仪;e)电泳仪;f)水平电泳槽;g)凝胶成像仪;h)高速冷冻离心机;i)水浴锅;j)样品冷藏柜(2 8);k)低温冰箱(-20);l)超低温冰箱(-80);m)磁力搅拌器;n)高压灭菌锅;o)可调微量移液器(10 L、100 L、200 L、1000 L)。5.2 用具:a)无 RNase 吸头(10 L、100 L、200 L、1000 L);b)96 孔酶标板;c)硝酸纤维素膜(NC 膜);d)无 RNase 离心管;e)PCR 反应管;f)研钵;g)样品袋;h)标签;i)镊子。5.3 主要试剂 5.3.1 RBSDV 抗体、RBSDV 特异性引物、液氮、三氯甲烷、异丙醇、乙
9、醇、M-MLV RT 反转录酶、RNA酶抑制剂、Taq DNA 聚合酶、DNA 分子标记、Gelred、琼脂糖等。5.3.2 血清学和分子生物学检测试剂配制见附录 A。注:除特殊说明外,所有实验用试剂均为分析纯或生化试剂。6 样品采集与保存 6.1 在越冬代、第一代灰飞虱成虫盛发初期进行灰飞虱样品采集,于稻茬麦田、旱作麦田、空茬田或田间杂草丛等灰飞虱喜好栖息环境,采用直径 33 cm的 35 目纱网在田间随机进行扫扑,分拣装入50 mL100 mL 试剂瓶中,100%乙醇浸泡,-20 冰箱保存备用。6.2 于玉米大喇叭口期至抽雄期,自矮化植株上采集具有典型蜡泪状突起的叶片或茎秆 5 g10 g
10、,单株样品袋存放。样品采集后,在冷藏条件下(2 8)运送至实验室。如果样品在 2 d 内检测,可暂时储存于 2 8;如果样品在 2 d 以后检测,保存至-80 超低温冰箱备用,样品避免反复冻融。7 检测 7.1 间接酶联免疫吸附测定 7.1.1 样品制备 单头灰飞虱为1个样品,置于小型离心管内,加300 L包被缓冲液研碎,4 冰箱放置过夜;待测植株样品按1:10(质量:体积)加入包被缓冲液,用研钵研磨成浆,4 冰箱放置4 h5 h。将两类研磨液8000 r/min离心3 min,上清液即为制备好的检测样品,设阴性对照和阳性对照,阴性对照样品为未感染病毒的健康玉米植株叶片,阳性样品为感染RBSD
11、V的玉米植株叶片,阴性样品及阳性样品皆通过RT-PCR检测及测序验证。阴性对照、阳性对照作相同的处理。样品提取缓冲液作空白对照。7.1.2 加样 在96孔酶标板上加入制备好的待检测样品、阴性对照、阳性对照、空白对照,每个样品平行加到两个孔中,每孔加样100 L,加盖,4 冰箱孵育过夜。7.1.3 洗板 孵育结束后,用PBST清洗酶标板3次5次。每孔每次加PBST洗液700 L,每次停留1 min2 min。7.1.4 加抗血清 用抗体稀释缓冲液按照相应病毒抗血清的使用浓度进行稀释,每孔加入稀释好的抗体液100 L,加盖,37 孵育1.5 h。7.1.5 洗板 同7.1.3。7.1.6 加酶标抗
12、体 用抗体稀释缓冲液按说明将酶标抗体稀释至工作浓度,并加入到酶联板中,100 L/孔,加盖,37孵育1.5 h。7.1.7 洗板 同7.1.3。7.1.8 加底物缓冲液 将现配的底物缓冲液按100 L/孔,加入到酶联板中,室温避光孵育1 h。7.1.9 读数 每孔加100 L 3M NaOH终止剂终止反应,用酶标仪在405nm波长下测定各孔的吸光值(OD405)。7.2 斑点酶联免疫吸附测定 7.2.1 NC 膜制备 剪裁7 cm7 cm大小的NC膜,用铅笔在保护纸外划成7 mm7 mm大小的方格,划好后去掉保护纸备用。7.2.2 样品制备 单头灰飞虱为1个样品,置于小型离心管内,加300 L
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