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    DB21∕T 2533-2015 赤羽病病毒荧光PCR检测方法.pdf

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    DB21∕T 2533-2015 赤羽病病毒荧光PCR检测方法.pdf

    1、ICS 65.020.30 B 41 DB21 辽宁省地方标准 DB21/T 25332015 赤羽病病毒荧光 PCR 检测方法 Method of the real-time RT-PCR for the detection of Akabane virus 2015-10-15 发布 2015-12-15 实施 辽宁省质量技术监督局 发 布 DB21/T 25332015 I 前 言 本标准按照GB/T 1.1-2009给出的规则起草。本标准由辽宁出入境检验检疫局提出并归口。本标准起草单位:辽宁出入境检验检疫局。本标准主要起草人:万超、吴斌、屈菲。DB21/T 25332015 1 赤羽病

    2、病毒实时荧光 PCR 检测方法 1 范围 本标准规定了赤羽病病毒(Akabane virus)实时荧光PCR检测方法。本标准适用于赤羽病病毒的检测。2 规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T 6682 分析实验室用水规格和试验方法 SN/T 1193 基因检验实验室技术要求 3 缩略语 下列缩略语适用于本文件。Ct值:达到阈值的循环数(Cycle Threshold)DEPC:焦碳酸乙二酯(Diethylpyrocarbonate)Taq酶:TaqDN

    3、A聚合酶(Taq DNA polymerase)RNA:核糖核酸(Ribonucleic Acid)实时荧光PCR:荧光逆转录聚合酶链反应(Real Time Fluorescent Quantitative Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction)4 原理 采用TaqMan方法,比对赤羽病病毒基因组S基因的核苷酸序列,设计特异性引物和特异性的荧光双标记探针进行配对。探针5端标记FAM荧光素为报告荧光基团(用R表示),3端标记TAMRA荧光素为淬灭荧光基团(用Q表示),它在近距离内能吸收5端荧光基因发出的荧光信号。PCR反应进入退火阶段时

    4、,引物和探针同时与目的基因片段结合,此时探针上R基团发出的荧光信号被Q基因所吸收,仪器检测不到荧光信号;而反应进行到延伸阶段时,Taq酶的5到3的外切核酸酶功能将探针降解。这样探针上的R基团游离出来,所发出的荧光不再为Q所吸收而被检测仪所接收。随着PCR反应的循环进行,PCR产物与荧光信号的增长呈现对应关系。5 试剂和材料 除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为GB/T 6682规定的一级水;所有试剂均用无RNA酶的容器分装。5.1 试剂 DB21/T 25332015 2 5.1.1 DEPC 水(见附录 A.1)。5.1.2 0.01mol/L PBS(见附录 A.2)5.1.3 T

    5、rizol 裂解液。5.1.4 三氯甲烷。5.1.5 75%乙醇(见附录 A.3)。5.1.6 异丙醇(-20预冷)。5.1.7 其他试剂:荧光 PCR 反应缓冲液:含 50mmol/L KCl(见附录 A.4),10mmol/L Tris-HCl(pH8.3)(见附录 A.5),2.5 mmol/L MgCl2(见附录 A.6)。可采用等效商品化试剂。5.1.8 dNTP Mixture(各 10 mM)、EX-Taq酶(5 U/L)。5.1.9 引物:合成一对特异性引物:上游引物 5-CCCCTGGTGCTGAGATGTTT-3,下游引物 5-CTTCCTCATGAAGTTGACATCCA

    6、T-3,TaqMan 探针(FAM)5-ACCCACTGGTTATCGACATGCACCG-3(TAMRA)均配制成 5 umol/L,-20 保存。5.2 仪器与耗材 5.2.1 荧光 PCR 检测仪。5.2.2 高速台式冷冻离心机(最高可达 13 000 r/min)。5.2.3 微量移液器:0.5 L10 L,5 L20 L,20 L200 L,100 L1000 L。5.2.4 混匀器。5.2.5 冰箱(2-8)。5.2.6 研钵。5.2.7 微量可调移液器。5.2.8 离心管。5.2.9 吸水纸。5.2.10 离心管 5.2.11 微量带芯吸嘴(10L,100L,1000L)。6 生

    7、物安全要求 采样、样品处理及检测过程所涉及的实验操作,应遵守 SN/T 1193 的有关规定。7 操作步骤 7.1 样本的采集与处理 7.1.1 血样前处理:取 2ml 全血样品,3000g 离心 10min,弃沉淀,收集上清。继续进行核酸提取。7.1.2 组织样品前处理:取 100mg 组织样品,剪碎,按 1:5 的比例加 0.01mol/L pH7.6PBS 研磨后冻融 3 次,离心,取上清液,-20保存,备用或直接继续进行核酸提取。7.2 核酸提取 所有RNA提取器皿用DEPC水浸泡24h,灭菌后方可使用。自上述完成前处理的样品中加入1ml Trizol裂解液,室温放置5min。加入0.

    8、2ml三氯甲烷,剧烈振荡15秒,室温放置3min,410000g离心15min。将水相转移到新管中,加入500l异丙醇(-20预冷),室温放置10min,410000g离心10min,吸取离心后的上清液转移至相应的新管中,上清液约吸取500l(注意不要吸出中间白色絮状层),轻轻颠倒DB21/T 25332015 3 均匀。于4条件下,12000r/min离心15min。取出Eppendorf管,轻轻倒去上清液,加入1ml 75%乙醇,颠倒洗涤。于4条件下,12000r/min离心15min。取出Eppendorf管,轻轻倒去上清液,倒置于吸水纸上,吸干液体,不同样品应在吸水纸不同地方吸干。每管

    9、加入20l灭菌DEPC水,轻轻混均,溶解管壁上的RNA,2000r/min离心5s,冰上保存备用。提取的RNA应在2h内进行RT-PCR 扩增或放置于-70冰箱备用。7.3 实时荧光 PCR 反应 7.3.1 反转录 于7.2 eppendorf管中依次加入:10反转录酶缓冲液(200 mM Tris/HCl,pH 8.4,和 500 mM KCl),2l;下游引物4l;dNTPs(10 mM each dATP,dCTP,dGTP,dTTP),2l;MgCl2(25 mM)2.0l;DTT(0.1M)2.0 l;AMV反转录酶(200 units/l),0.5l,补水至20l。瞬时离心,95

    10、 5min,45 40min。立即进行PCR扩增或-20保存备用。7.3.2 荧光 PCR 反应体系:10PCR 缓冲液,2.5L;2.5mmol/L MgCL2 5L;10 mmol/L DNTP 0.75L,10mol/L 上下游引物 1L,5mol/L 探针 1L,0.5L Taq 酶(2U/L),DNA 2L 用 DEPC 水补足 25L体系。需配制的荧光 PCR 预混反应液数量=样品个数+对照个数+1。将各试剂按使用量吸取到微量离心管中,充分混匀,然后再每个 PCR 光学管中分装 25L。7.3.3 反应参数 将7.3.1中离心后的PCR管放入实时荧光PCR检测仪内,记录样本摆放顺序

    11、。循环参数设置如下:第一阶段,变性 95 5 min,反转录 45 40 min;第二阶段,预变性 95 5 min;第三阶段,95 30 s、60 1 min,40 个循环,荧光收集设置在第三阶段每次循环的退火延伸时进行。8 结果判定 8.1 结果分析条件设定 读取检测结果。阈值设定原则以阈值线刚好超过正常阴性对照品扩增曲线的最高点,不同仪器可根据仪器噪音情况进行调整。8.2 质控标准 8.2.1 阴性对照无 Ct 值并且无扩增曲线。8.2.2 阳性对照的 Ct 值应28,并出现特定的扩增曲线。8.2.3 如阴性对照和阳性对照条件不满足以上条件,此实验视为无效。8.3 结果描述及判定 8.3

    12、.1 阴性判定 无Ct值并且无扩增曲线,表明样品中无赤羽病病毒核酸。8.3.2 阳性判定 Ct值30,且出现特定的扩增曲线,表示样品中存在赤羽病病毒核酸。DB21/T 25332015 4 A A 附 录 A(规范性附录)试剂的配制 A.1 DEPC水 去离子水按0.1%加入DEPC,37静置过夜,采用(121士2)/0.1Mpa,15min高压灭菌后贮存于4。A.2 0.01mol/L PBS 先配制A液、B液。A液(0.2mol/L NaH2PO4溶液):称取一水合磷酸二氢钠(NaH2PO4H20)27.6g,或二水合磷酸二氢钠(NaH2PO42H20)31.2g,溶于蒸馏水中,定容至1L

    13、。B液(0.2mol/L Na2HPO4溶液):称取十二水合磷酸氢二钠(Na2HPO412 H20)71.6g,或二水合磷酸氢二钠(Na2HPO42H20)35.6g,溶于蒸馏水中,定容至1L。称取17g氯化钠,用适量蒸馏水溶解,量取13mL A液和87mL B液,混合,用蒸馏水定容至2L。采用(121士2)/0.1Mpa,15min高压灭菌后贮存于4。A.3 75乙醇溶液 量取75ml无水乙醇溶液,加入双蒸水中,充分混匀,定容至100ml。室温保存。A.4 50mmol/L 氯化钾(50mmol/L KCl)称取3.73g氯化钾,加入双蒸水,充分溶解,定容至1000ml。室温贮存。A.5 10mmol/L Tris-HCl 称取 0.3028g Tris,用双蒸水溶解,然后用 HCl 调节 pH 至 8.0,最后定容到 250mL,室温贮存。A.6 2.5 mmol/L MgCl2 称取0.059g MgCl2,用双蒸水溶解,定容到250mL,采用(121士2)/0.1Mpa,15min高压灭菌后贮存于4。_


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