临床原始样本采集常见问题.ppt

,单击此处编辑母版标题样式,单击此处编辑母版文本样式,第二级,第三级,第四级,第五级,*,原始样本采集及运送,检验科,王连明,实验室经常遇到的问题,：,问,题,举,例,标本与患者标签不符,在输液处采集血液标本,采血时间错误,采血时间过长,采血容器错误,标本处理不及时,标本运输条件错误,结果与临床不符（贴错、坐车化验等）,结果稀释，输入物质浓度异常,给予药物或激素后短时间内采血,由于浓缩效应，白蛋白和钙等浓度增高,如非酸化尿液收集时钙和磷沉淀；血液采集于,KEDTA,试管中，钾增高，钙和碱性磷酸酶降低；如果试管中无糖酵解抑制物，则葡萄糖损失增加。,如果血细胞没有在,8,小时内分离，则钾，乳酸脱氢酶和磷等增高（节假日、下班），尿液、便、培养等。,如果动脉血标本不是保存在冰水中并在,30,分钟内测定，则氧分压下降，二氧化碳分压增高；如果标本不是避光保存，则胆红素、尿胆原含量减少。,结果回报时间问题,报告周转时间,或回报时间,(Turnaround Time,，,TAT),血、尿、便常规检验自检查开始到出具结果时间,30,分钟，生化、凝血、免疫等检验项目自检查开始到出具结果时间,6,小时，细菌学等检验项目自检查开始到出具结果时间,4,天。,急诊血、尿、便常规检验自检查开始到出具结果时间,30,分钟，生化、凝血、免疫等检验项目自检查开始到出具结果时间,2,小时。,遵照医嘱,充分准备,明确检验项目、目的、采集标本量、采集方法及注意事项,病人准备：向病人解释,物品准备：容器、标签等,护士准备：洗手、戴口罩,严格查对,正确采集：时间、量、方法,及时送检,原始样本采集原则,病人准备,1.,血液标本采集前,（需要时）病人空腹,（,OGTT,）,2.,记录采集病人标本时间,3.,固定采集血液标本的姿势,4.,采集血液标本时动作要迅速,5.,采集血液前要限制病人的运动量,6.,控制咖啡、浓茶及酒精摄入,7.,严格控制病人用药,8,尽早通知病人，做好解释工作,、种类：,全血标本,血沉、血常规,血清标本,大部分生化、免疫学测定等,血培养标本,病原菌,、方法,毛细血管采血法（床旁检测、手工检测）,静脉采血法,动脉采血法,(,血气分析）,原始样本采集方法,血液样本采集顺序,第一管、无添加剂真空管,第二管、分离胶管（生化管）,但如有促凝剂，可能影响凝血测定,第三管、凝血分析采血管,一般第三管,，因组织液有启动凝集作用,第四管、血常规采血管,因,EDTA,与钙、镁螯合，同时,ALP,结果偏低，,所以不能放到生化管前,血常规管,适用于血常规、血型鉴定、交叉配血试验及其它血液学检查（如,血沉,）等,抗凝剂：,EDTA-K2,、,EDTA-K3,血液标本量,极限低值,为,1.5ml,采血后立即轻轻颠倒,180,度混匀,10,次，,但动作勿剧烈,血常规样本采集及运送,采血前患者应尽量减少运动,保持平静（至少,15min,）,。,静脉采血时患者应取坐位或卧位。,冬天，患者从室外进入室内，应等其暖和后再采血。,采用真空采血法，抽取患者,静脉全血,2ml,。,真空采血管内的抗凝剂为,EDTA-K2(,含量为,1.5-2.2mg,ml,血液,),。,止血带压迫时间,宜小于,1,分钟，回血后立即松开。,采血后需,立即,将血液样本,轻轻颠倒混匀,10,次,。,输液的患者最好在,输液完毕至少,1,小时后,采血送检；如果输液过程中急需检测，可选择输液对侧肢体采血。,疟原虫采血时间：应在患者发作后,10,小时内采血送检，最好在寒战高热时采血。,注射器采血时，应拔下针头和试管塞，沿管壁缓慢注入。,不好的习惯：拍打采血处、患者握拳,尿液样本采集及运送,清洁样本采集部位,：收集尿液前应用肥皂洗手、清洁尿道口及其周围皮肤。,避免污染,：应该避开月经、阴道分泌物、包皮垢、粪便、清洁剂等各种物质的污染，不能从尿布或便池内采集样本。,使用合格的容器,：应用透明、不与尿液发生反应的惰性环保材料制成的一次性容器，容器必须干燥、清洁、防渗防漏，可密封运送，而且具有患者唯一标识。,特殊要求：若需采集清洁尿，如中段尿、导尿样本或耻骨上段尿，一般应由医护人员操作，并告知患者及家属有关注意事项。若采集幼儿尿，一般由儿科医护人员指导，使用小儿尿袋收集。,尿液样本采集及运送,粪便样本采集及运送,容器应,清洁,、干燥、有盖，,无吸水性,、无渗漏。,一般留取,3-5g,的新鲜粪便，并尽量选择其中含有粘液、脓、血的部分。如果外观无异常，需从,表面、深处及粪端多处取材,。,一般不应采集便盆或坐厕的粪便作为样本。,粪便样本应避免混有尿液、消毒剂及污水等杂物。,阿米巴,滋养体检查，挑取粪便的脓血部分或稀软部分，立即,保温送检,。,浆膜腔积液样本采集及运送,穿刺成功后，留取,2 ml,液体于无菌容器内。,为防止样本凝固，最好采用,EDTA-K2(,用量为,1.5-2.2 mg,ml),抗凝的真空采血管留取。,脑脊液样本采集及运送,脑脊液分别收集于,3,个无菌试管内，每管,1-2 ml,；第,1,管做细菌培养，第,2,管做化学和免疫学检查，第,3,管做常规检查；如疑有恶性肿瘤，可再留,1,管做脱落细胞学检查。,血凝管,适用于,PT,、,APTT,、,FIB,、,PT,、,D-,二聚体、凝血因子检测等。,抗凝剂：柠檬酸钠,0.129mol/L,抗凝剂与血样的体积比,(1,：,9),采血后立即颠倒,180,度摇匀,10,次,凝血检查样本采集及运送,采血时环境应温暖，患者要放松，防止静脉痉挛，,采血前不应拍打前臂,。,压脉带不要过紧,，,应控制在,1min,内,防止血液成分及浓度发生改变。,正确选择采血容器，看清采血标识，避免抽血不当及采血不足。,需要抗凝的血液，采血后立即将血液与抗凝剂充分,颠倒混匀,10,次,（避免用力震荡，以防溶血及泡沫产生）。,同一病人进行多种血液样本采集时，凝血检查应在,第三管采集,。,为保证检测结果准确，,不能在静脉输液同侧臂或输液三通处进行采血,(,因为采取的样本常含有小凝血块及污染的组织液，有时还可混有此途径给予的药物，如肝素反流在样本中，导致凝血时间不准,),。,出凝血检验样本的采集，应使用枸橼酸钠抗凝剂；血液与抗凝剂的体积比一般为,9:1,，当,样本的压积在,0.25%,HCT,0.55%,时，应与检验科联系，对血液与抗凝剂的体积比进行调整。,生化检查样本采集及运送,乳酸采血时不能使用压脉带，患者不可用力握拳或挤压。,脂类检查样本需空腹,12h,微生物检验标本送检中常见问题,1.,样本量,太少：捕捉细菌的几率,小,；,2.,样本量,太多：与培养基比例不适当，营养供给不足,3.,采集的标本与申请单不一致；,4.,一个容器贴两个条码，第二个条码将第一个信息盖住，实验室无法识别,，如痰细菌和真菌培养共用一个容器，两个条码重叠，要求两个医嘱分别用两个容器盛装样本。,5.,非无菌容器留取的标本或采用不合格的容器；,6.,容器中无标本；,7.,将有菌容器,中,的标本重新倒入无菌容器；,8.,盛标本的容器未加盖；,9.,取材后将标本放置时间过长；,10.,换药后取材；,微生物检验标本送检中常见问题,11.,从输液管直接采集标本；,12.,正在点滴抗菌药物过程中采集血液标本；,13.,用注射器直接送检血液标本；,14.,从尿液收集袋中直接抽取标本；,15.,用拭子采集厌氧菌标本；,16.,停医嘱,后继续送样本,；,微生物检验标本送检中常见问题,17.,一个医嘱重复检验；,18.,用错采血管：真菌D葡聚糖检测,(,要求用,BD,厂家不带分离胶的血清采血管,),、内毒素检测,（,BD,厂家绿的盖的抗凝管）,19.,组织标本用纱布包裹,送检,；,20.,血培养瓶上条码被,患者信息条码,覆盖,，导致血瓶放入仪器时无法扫描条码。,21.,标本上条码脱落；,微生物检验标本送检中常见问题,1,、由于个别科室血培养瓶取后没及时使用，造成培养瓶过期；,2,、还有的科室采错血和重复采血造成培养瓶浪费，所以，各科室如做血培养或无菌体液培养需要用培养瓶的，一律请护士长开方盖章后微生物室才予以发放；,3,、我们将定期监察瓶子的使用情况，对于送检样本量与取瓶量不符的科室，将报告院里相关主管部门处理。,微生物检验标本送检中常见问题,耗材管理问题,无菌尿杯：调料容器,其它样本容器：全院公用,条码粘贴问题,1,、采血管粘贴问题,标签与样本种类不符（管的颜色）,翘边（第一时间，过后不粘）,信息丢失或打印不清,2,、样本保存时间,3,、拒收样本问题（乳糜、溶血、黄疸）,什么样样本拒收,拒收样本换科送样（如血液拒收，改号送急检）,拒收样本原样本号采血,条码粘贴问题,条码粘贴问题,条码粘贴问题,条码粘贴问题,条码粘贴问题,占用大家的时间，,谢谢各位的耐心！,