基因编辑快速改良玉米开花期研究_邢瑞霞.pdf
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1、基因编辑快速改良玉米开花期研究邢瑞霞1,2,朱金洁2,祁显涛2,谢传晓2,刘昌林2,江海洋1(1.安徽农业大学生命科学学院,安徽合肥 230036;2.中国农业科学院作物科学研究所,北京 100081)摘要 为获得早熟玉米种质,选择水稻光周期敏感基因 Ghd7 的同源基因 ZmCCT10 作为研究目标,利用基因编辑技术针对该基因的CDS 区域进行敲除,获得相关材料后,选择其中表型较为明显的 2 种,进行生育期及植株表型等相关性状的数据调查与分析,发现敲除该基因后,在长日照的情况下,与野生型相比,编辑后的材料明显提前开花,并出现矮化等明显有利性状。ZmCCT10 在玉米的开花调控网络中起抑制作用
2、,敲除该基因可明显解除抑制。关键词 CRISPR/Cas9;ZmCCT10;开花期中图分类号 S513 文献标识码 A 文章编号 0517-6611(2023)03-0096-05doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2023.03.021 开放科学(资源服务)标识码(OSID):Rapid Improvement of Maize Flowering Period by Gene Editing TechnologyXING Rui-xia1,2,ZHU Jin-jie2,QI Xian-tao2 et al(1.College of Life Sciences,Anhu
3、i Agricultural University,Hefei,Anhui 230036;2.In-stitute of Crop Science,Chinese Academy of Agricultural Sciences,Beijing 100081)Abstract In order to obtain early-maturing maize germplasm,the homolog gene ZmCCT10 of rice photoperiod sensitive gene Ghd7 was select-ed as the research target,and the g
4、ene editing technology was used to knock out the CDS region of this gene.After relevant materials were ob-tained,two of them with relatively obvious phenotypes were selected for data investigation and analysis on related traits such as growth period and plant phenotype.It was finally found that afte
5、r the gene was knocked out,compared with the wild type,the edited material significantly bloomed ahead of time and exhibited significantly advantageous traits such as dwarfing.ZmCCT10 played an inhibitory role in the flowering reg-ulatory network of maize,and knock-out of the gene could significantl
6、y relieve the inhibition.Key words CRISPR/Cas9;ZmCCT10;Flowering time作者简介 邢瑞霞(1995),女,山东济宁人,硕士研究生,研究方向:基因编辑技术改良玉米生育期及抗逆能力。通信作者,教授,博士,从事玉米逆境生物学研究。收稿日期 2022-03-22 玉米是在全球广泛种植的主要粮食作物之一,也是重要的饲料作物和重要的工业原料。高产、稳产、优质、适宜的生育期、适应机械化一直都是国内外玉米育种的主要目标。生育期作为玉米重要的农艺性状,其改良工作也一直是玉米育种工作的研究热点。玉米起源于热带的墨西哥西南部,由大刍草驯化而来,对光周
7、期敏感,并需要在短日照条件才能开花1,利用基因编辑技术减少玉米植株对光周期的敏感性及改良玉米的开花期在农业生产上有着重要意义。适当缩短生育期不仅能够扩大其种植范围,提高复种指数,而且可以有效降低遭遇抽雄扬花期的高温危害、灌浆后期早霜危害、成熟期雨季穗发芽以及晚期病虫害等的概率。ZmCCT10(Zm00001eb418700)位于玉米的 10 号染色体,属于玉米中的 CCT 家族,与水稻光周期反应调节因子 Ghd7同源,同源性在 36%左右,其编码的蛋白质含有保守的 CCT结构域,作为转录因子微量调节开花开关基因 ZCN8 的表达,进而影响玉米生育期2-5。笔者以基因编辑 ZmCCT10 基因玉
8、米 T6 代纯合突变体系以及亲本 KN5585 自交系为试验材料,在短日照(海南)、长日照(北京)地区进行种植,通过对植株开花期及其他农艺性状的观察,研究 ZmCCT10 突变对于生育期的影响,以期为进一步探索通过改良开花期进而达到稳产、增产的目的提供了新方法。1 材料与方法1.1 供试材料 ZmCCT10 基因来自玉米本身的内源基因,通过基因测序获得转化受体 KN5585 的 CDS 序列后,进行sgRNA 的设计,构建 CRISPR/Cas9 敲除载体,通过农杆菌转化后获得转基因材料,经过多代自交获得不含有转基因元件的基因编辑材料,繁殖至 T6代 ZmCCT10-1IT 及 ZmCCT10
9、-1IA 株系;亲本对照自交系 KN5585,由未米生物科技(江苏)有限公司提供。1.2 Cas9 基因编辑敲除载体构建以 KN5585 为背景材料,其基因序列与 B73 略有差别。通过测序获得 ZmCCT10的 CDS 序 列 后,在 http:/ 网站中设计sgRNA,为保证编辑效率,一般选择5GNGG3的 sgRNA,再利用 https:/www.gramene.org/网站进行 BLAST 后选取特异性较高的 sgRNA,构建可以通过胚荧光筛选的单 sgRNA-Cas9 敲除的基因编辑载体。基因编辑基础载体 CPB-Cas9(已连入 Ubiquitin 启动子驱动的 Cas9 表达盒)
10、由中国农业科学院谢传晓课题组提供,加入荧光筛选系统快速辨别籽粒阴阳性。荧光筛选系统采用胚特异性启动子 ZmESP 启动 RFP 荧光蛋白。1.3 转化鉴定与基因型鉴定 将构建好的基因编辑敲除载体送至未米生物科技(江苏)有限公司进行农杆菌转化,获得转基因材料。收获的种子经过荧光筛选后,挑选阳性籽粒进行种植,进行 ZmCCT10 靶基因突变鉴定获得转基因材料,并将突变的材料进行自交,从收获的籽粒中选择选阴性籽粒进行种植,直至获得纯合无转基因元件的突变体材料。待 T6代 ZmCCT10-1IT 及 ZmCCT10-1IA 株系成长到 3叶期,采用 CTAB 法提取其叶片 DNA 后进行 Cas9 P
11、CR 检测、Bar PCR 检测及 Bar 试纸条检测,确定 ZmCCT10-1IT 及 安徽农业科学,J.Anhui Agric.Sci.2023,51(3):96-100,105ZmCCT10-1IA 为无转基因元件株系,再进行靶基因检测,PCR 产物送至生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序,利用 SnapGene 及 DNAMAN 进行序列比对确定其基因型。所需检测引物序列见表 1,检测程序见表 2。表 1 检测所用引物序列Table 1 Primer sequence used for detection产物Product引物名称Primer name引物序列 Primer seq
12、uence(5 to 3)扩增长度Ampl-ification lengthbp退火温度Annealing tempe-ratureBarBar-FATGCCAGTTCCCGTGCTTGA41258Bar-RCACCATCGTCAACCACTACACas9Cas9-FCAACCGGAAAGTGACCGTGA56858Cas9-RCACCACCTTCACTGTCTGCAZmCCT10 ZmCCT10F CTCTATCGATCAACAGCGGC51760ZmCCT10R CGGGAGCAATACTTACGATG表 2 检测 PCR 扩增反应程序Table 2 Procedure for PCR r
13、eaction温度Temperature时间Time循环数Cycle number953 min 19515 s323558/6025 s7215 s/kb725 min116forever1.4纯合材料表型调查方法将稳定且纯合的无转基因ZmCCT10-1IT、ZmCCT10-1IA 株系以及亲本对照 KN5585 种植在短日照的海南乐东黎族自治县、长日照的北京南口中国农业科学院试验基地 2 个地区,经纬度分别为 109.17E,18.7N 和 116.2E,40.2N,并调查花期和植株农艺性状,具体调查指标及方法见表 3,探究 ZmCCT10 基因对于玉米生育期的影响。表 3 表型调查指标及
14、方法Table 3 Phenotypic survey indicators and methods调查指标Survey index指标Specific index描述Description开花期 Bloom-ing period抽雄期每行 50%以上的植株雄穗顶端露出顶叶的天数(d)吐丝期每行 50%以上的植株雌穗抽出花丝的天数(d)散粉期每行 50%以上的雄穗主轴散粉 50%的天数(d)农艺性状株高地面水平高度至雄穗主轴顶点高度(cm)Agronomictraits穗位高地面水平高度至第 1 有效雌穗(上下)的穗柄着生部位高度(cm)去雄株高地面水平高度至雄穗最底端分支节点处高度(cm)1
15、.5 数据统计 数据取样本量的平均值,经过 Excel 整理及初步分析后,用 SigmaPlot 14.0 进行统计分析,数据差异显著采用经典 T 检验计算,表示 P0.01 极显著差异,表示P0.05 表示无显著差异。2 结果与分析2.1 Cas9 基因编辑敲除载体图谱 U6 启动单 sgRNA 的荧光敲除载体图谱如图 1 所示,命名为 CPB-Cas9-ZmCCT10。用 E35S 启动子 Bar 的表达,可在真核生物中检测是否含有该载体;UBI 强启动子启动作为编辑器的 Cas9,保证 Cas9 蛋白的高表达;胚特异性启动子 ZmESP 启动 RFP 表达,阳性籽粒可在波长为 520 n
16、m 的绿色激发光下配以 LUV-50A 红色眼镜进行观察,阳性籽粒会发出明亮的红光,阴性籽粒则不发光;U6-2 启动 sgRNA。图 1 CPB-Cas9-ZmCCT10 载体图谱Fig.1 Vector of CPB-Cas9-ZmCCT102.2 无转基因元件鉴定以及基因型鉴定 将构建好的载体送至未米生物科技(江苏)有限公司进行转化,T0获得 42 个植株,经过转基因元件 Bar 和 Cas9 检测后,获得 23 株阳性植株,占比 54.76%,获得 5 种转化事件,挑选其中 2 种移码突变材料继续进行生育期研究。根据其突变类型将这 2 种株系分别命名为 ZmCCT10-1IT 株系及 Z
17、mCCT10-1IA 株系。在后代中,分离出无转基因元件且含有目标突变的纯合突变单株,自交繁种。选用 T6代遗传稳定的无转基因元件材料。将所需检测植株进行转基因元件检测以及靶基因检测,图2a 为 Bar 检测及试纸条检测结果,以载体转化的农杆菌作为阳性对照,野生型作为阴性对照,水作为空白对照,对目标植株进行 Bar 检测,阳性植株检测出符合大小的目的条带,阴性植株及阴性对照、空白对照均未检测出条带,鉴于 Bar检测容易出现污染,同时使用 Bar 试纸条进行蛋白水平的检测,2 种检测结果一致;图 2b 为 Cas9 检测结果,对照同 Bar检测,阳性植株检测出符合大小的目的条带,阴性植株及阴性对
18、照、空白对照均未检测出条带;图 2c 为靶基因检测结果,以载体质粒作为阴性对照、水作为空白对照以及野生型作为阳性对照,2 种突变体株系均检测符合大小的目的条带。将测序后的靶基因序列利用 DNAMAN 及 SnapGene 进行比对,确定突变株系的突变类型,如图 3a 所示,ZmCCT10-1IT 株系在 PAM 上游第 4 位发生了一个加 1T 的插入;如图3b 所示,ZmCCT10-1IA 株系在 PAM 上游第 4 位发生了一个加 1A 的插入,均引起移码突变。根据检测得到的序列,利用7951 卷 3 期 邢瑞霞等 基因编辑快速改良玉米开花期研究DNAMAN 软件对靶基因蛋白进行预测,如图
19、 4a 和 4b 所示,2种移码突变均能够引起蛋白的提前终止。注:a.Bar 检测及试纸条检测图;b.Cas9 检测图。1.阳性对照,载体农杆菌;2.阴性对照,野生型亲本 KN5585;3.空白对照,ddH2O;4、5.阳性 Zm-CCT10-1IT 株系植株;6、7.阴性 ZmCCT10-1IT 株系植株;8、9.阳性 ZmCCT10-1IA 株系植株;10、11.阴性 ZmCCT10-1IA 株系植株。c.ZmC-CT10 靶基因检测胶图;1.阴性对照,载体质粒;2.空白对照,ddH2O;3.阳性对照,野生型亲本 KN5585;4、5.ZmCCT10-1IT 株系;6、7.ZmC-CT10
20、-1IA 株系。Note:a.Bar test and strip test chart,b.Cas9 test chart.1.Positive control,vector agrobacterium;2.Negative control,wild type parent KN5585;3.Blank control,ddH2O;4,5.Positive ZmCCT10-1IT strain plants;6,7.Negative ZmCCT10-1IT plant;8,9.Positive ZmCCT10-1IA strain plants;10,11.Negative ZmCCT10-
21、1IA strain plants.c.ZmCCT10 target gene detection gel map;1.Negative control,vector plasmid;2.Blank control,ddH2O;3.Positive control,wild type parent KN5585;4,5.ZmCCT10-1IT strain;6,7.ZmCCT10-1IA strain.图 2 转基因成分检测Fig.2 Detection of transgene elements注:a.ZmCCT10-1IT 株系与野生型比对结果图;b.ZmCCT10-1IA 株系与野生型对
22、比结果图;WT 为野生型,亲本 KN5585;红色框内为 sgRNA。Note:a.The comparison result between ZmCCT10-1IT strain and wild type;b.The comparison result between ZmCCT10-1IA strain and wild type;WT is wild type,parent KN5585;the red box shows sgRNA.图 3 靶基因序列比对Fig.3 Comparison of sequence alignment of target gene2.3 纯合突变体株系
23、ZmCCT10-1IT 和 ZmCCT10-1IA 对开花期的影响 将阴性纯合突变株种植到海南和北京,种植模式为 4 m 行长,17 株,株间距 25 cm,行间距 60 cm,按每行成活情况观察各株系抽雄期、散粉期、吐丝期等与开花相关的表型,并进行数据统计与分析。如图 5a、5b、5c 所示,在海南短日照地区,ZmCCT10-1IT 株系与野生型相比,抽雄期提前 3 d,散粉期提前 4 d,吐丝期提前 2 d,统计结果表明差异极显著;ZmCCT10-1IA 株系与野生型相比,抽雄期提前 1 d,散粉期与野生型一致,吐丝期推迟 1 d,抽雄期和吐丝期差异显著。如图 5d、5e、5f 所示,在北
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